“Herramientas moleculares para la investigación y el diagnóstico de

Inscripción:
Información:
Actividades:
El curso comprende actividades teóricas (30%) y
prácticas (70%). Las actividades prácticas serán
realizadas en paralelo a las actividades teóricas y
estarán destinadas a la consolidación de los
conceptos previamente revisados
Duración del Curso:
El curso tendrá una intensidad horaria de 6
horas/diarias, para un total de 60 horas (2
semanas) del 18 de Febrero al 1 de Marzo del
2013.
Departamento de Ciencias Celulares y
Moleculares - Facultad de Ciencias y Filosofía –
Universidad Peruana Cayetano Heredia.
Laboratorio de Bioinformática y Biología
Molecular – Tercer Piso (306 - 307) del
Laboratorios de Investigación y Desarrollo (LID)
Av. Honorio Delgado 430. Urb.
Ingeniería – SMP
Teléfonos: 319-0000 anexos 2604
Celulares: 945199277
Caja UPCH: 03133001-Cursos Cortos
Horario:
Teoría: Lunes a Jueves – 10 – 12 am
Práctica: Lunes a Jueves – 2- 6 pm y los Viernes
UNIVERSIDAD PERUANA
CAYETANO HEREDIA
LABORATORIO DE
BIOINFORMÁTICA Y
BIOLOGÍA MOLECULAR
CURSO: Teórico – Práctico
“Herramientas moleculares para
la investigación y el diagnóstico
de enfermedades infecciosas”
Depósito en Banco de Crédito del Perú
Cta N° 1931170686 – 009 a nombre de
Universidad Peruana Cayetano Heredia.
Email:
Curso.corto@hotmail.com
Coordinador: PhD Patricia Sheen
Organizador: MSc. Juan Carlos Gaspar
Ponentes:
Costo:
Teoría
Práctica
Teoría y
Práctica
Estudiantes
S/. 200
S/. 600
S/. 800
Profesionales
S/. 200
S/. 800
S/. 1000
Vacantes Limitadas 30
Valor Crédito: 3 Horas Crédito
PhD Patricia Sheen Cortavarría
PhD. Daniel Rueda
Dra. Maritza Calderón
MSc. Juan Carlos Gaspar
MSc (c) Antonio Flores Tumba
http://www.facebook.com/events/510
429408988045/
Del 18 de Febrero al 1 de Marzo del
2013
Presentación:
Programa de clases:
Programa de clases:
Las continuas implementaciones de las
técnicas moleculares en investigación y en el
diagnóstico de enfermedades infecciosas, la
estandarización de protocolos experimentales y
la necesidad de que estos conocimientos
lleguen a una mayor
población de
investigadores, profesionales de la salud y
estudiantes, nos han conducido a ofrecer a la
comunidad este curso teórico práctico, que
permitirá a los participantes, conocer en
detalle las herramientas moleculares para el
diagnostico de enfermedades infecciosas y su
uso en la investigación.
Lunes 18.- Genética molecular
Requisitos funcionales y estructurales del
material genético: codificación, replicación y
expresión.
Práctica:
Extracción ADN genómico mediante
proteinasa K de Mycobacterium
tuberculosis inactivado.
Martes 19.- Tuberculosis Resistente
Definiciones e historia de la TB resistente,
epidemiología molecular de la TB en el Perú: TB
MDR, mecanismos moleculares de resistencia.
Práctica:
Extracción de ARN mediante Trizol de
Mycobacterium tuberculosis inactivado.
Miércoles 20.- Tipos de PCR
Fundamento teórico de la reacción en cadena de
la polimerasa (PCR). Tipos de PCR, RT-PCR.
Práctica:
Retrotranscripción del ARN del
Mycobacteiun tuberculosis.
Electroforesis del cDNA
Jueves 21.- Enfermedad de Chagas
Historia de la Enfermedad de Chagas, aportes de
los investigadores, avances, epidemiología
nacional, regional e internacional.
Práctica:
PCR convensional y PCR en Tiempo Real
con Sybr Green – Evaluación del cambio
de expresión del gen de pirazinamidasa
Viernes 22: Análisis e interpretación de
resultados:
PCR en Tiempo Real con sondas TaqMan
para el diagnostico de M. tuberculosis
Lunes 25.- Taenia solium
Historia de la Enfermedad, desarrollo, evolución,
aportes de los investigadores.
Práctica:
Electroforesis en geles de acrilamida de
las proteínas de Taenia solium.
Transferencia a una membrana de
Nitrocelulosa
Martes 26.- Otras Herramientas moleculares
Técnicas de Hibridación, Blotting: Southern blot,
Northern blot e inmuno ensayos con Western
blot y ELISAS.
Práctica:
Western Blot para la detección de
antígenos de Taenia solium.
Miércoles 27.- Marcadores moleculares
Marcadores moleculares: marcadores de ADN
obtenidos por hibridación, marcadores de ADN
obtenidos por PCR.
Práctica:
Preparación de ADNg de Taenia solium
para su genotipificación.
Jueves 28.- Trabajos de Investigación
Comprender el mecanismo de resistencia de
Mycobacterium tuerculosis a pirazinamida.
Práctica:
Genotipificación de Taenia solium por
microsatelites
Viernes 1:
Ensayo por inmunoabsorción ligado a
enzimas (ELISA) para la detección de
antígenos de Taenia solium.
Interpretación de resultados de la
genotipificación de M. tuberculosis.
Clausura del curso
Objetivos:
Capacitar a los participantes en
pruebas moleculares para el diagnóstico
de enfermedades infecciosas y su uso en
la investigación.
Conocer las diferentes
herramientas en biología molecular y su
s aplicaciones en el diagnostico de las
enfermedades infecciosas.