A-055 - Universidad Nacional del Nordeste

Resumen: A-055
UNIVERSIDAD NACIONAL DEL NORDEST E
Comunicaciones Científicas y Tecnológicas 2004
Respuesta del cultivo de soja (Glycine max) a la inoculación con
Bradyrhizobium japonicum y Azospirillum brasilense,
en la localidad de La Clotilde provincia de Chaco.
Iglesias, María C. - Kochaniuk, Danilo E. - Poliszuk, Gustavo D.
Cátedra de Microbiología Agrícola – Facultad de Ciencias Agrarias – UNNE.
Sargento Cabral 2131 – (3400) Corrientes – Argentina
Tel./fax: +54(03783)427131
E-mail:mariaiglesias@ciudad.com.ar
ANTECEDENTES
El cultivo de soja presenta la característica de generar nódulos en sus raíces como consecuencia de una
asociación simbiótica con bacterias específicas como lo es Bradyrhizobium japonicum. Dicha característica le permite al
cultivo abastecerse de nitrógeno proveniente del aire, cubriendo hasta un 70 % las necesidades de este nutriente
(Weber, 1996).
Una conocida dificultad, que puede interferir la nodulación inducida por el agregado de inoculante a la semilla
de soja, es la causada por la presencia de una activa y numerosa población naturalizada en el suelo. Normalmente, la
capacidad de infección de estas cepas es alta, dando como resultado un gran porcentaje de nódulos inducidos por ellas,
condición favorecida por su adaptación ecológica al medio (Peticari et al, 1998).
Debido a la competencia con la cepa naturalizada el inoculante debe contener 1x109 ufc/ml a la elaboración y
esto nos daría aproximadamente unas 80.000 bacterias por semillas (Fernández Canigia, 2003).
Azospirillum es una rizobacteria fijadora de nitrógeno del aire que promueve el crecimiento y producción
cuando es inoculada, especialmente a gramíneas (Bellone, 1997).
Se propuso que uno de los factores que proporciona el crecimiento radical esta relacionado con la producción
de sustancias del tipo hormonal como auxinas, giberelinas, citocininas (Tien et al, 1979).
De lo anteriormente descripto surgió el objetivo de obtener la respuesta del cultivo de soja a la inoculación con ambas
bacterias, Bradyrhizobium japonicum y Azospirillum brasilense , a media dosis.
MATERIALES Y MÉTODOS
El ensayo se realizó en la zona de La Clotilde, provincia de Chaco. El suelo del predio no había sido cultivado
durante los últimos 6 años debido a que se encontraba en una zona baja y con las abundantes lluvias se inundaba.
La primer siembra se hizo con labranza convencional y fue soja de primavera.
La soja siguiente se sembró sobre el rastrojo de la antecesora sin remoción del suelo.
Se realizaron tres parcelas de 28 líneas ( a 56 cm) de ancho y con un largo de 500 m. La densidad de semilla
utilizada fue de 31 semillas por metro .
Se tomaron dos muestras de suelo, compuestas de 5 submuestras para determinación de la fertilidad en el
momento de la siembra.
Muestra
pH
M.O.
P
Ca
Mg
k
Na
%
ppm
meq/100g
meq/100g
meq/100g
meq/100g
1 (resto del
7.16
1.55
37.49
10.64
1.8
1.25
1.02
lote)
2 (manchones)
6.25
2.40
48.20
12.72
0.92
1.83
0.28
Los tratamientos aplicados fueron:
T0: testigo (sin inocular)
T1: Inoculado con Bradyrhizobium japonicum
T2 : inoculado con media dosis de Bradyrhizobium japonicum y Azospirillum brasilense
La fecha de siembra fue el 10 de febrero de 2004.
Posteriormente se realizaron 3 muestreos, en las siguientes fechas:
21 de marzo de 2004. (40 días)
02 de mayo de 2004. (82 días )
18 de junio de 2004, fecha en que se realizo la cosecha.(129 días)
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El muestreo fue al azar sistemático en le centro de la parcela descartando las cabeceras o extremo de parcela,
los sitios de muestreo fueron nueve con una diferencia de cuarenta metros en los surcos previamente sorteados. El
número total de plantas fue variable en relación a plantas aislada o dos o tres muy juntas.
En las plantas muestreadas se determinó número de nódulos en raíz principal , secundaria y suma de ambas
para obtener el total por planta, luego el peso de los mismos con balanza de preescisión para obtener el peso promedio
de nódulo en raíz principal, secundaria y total para los diferentes tratamientos.
Se determinó el peso seco aéreo y radical de cada una de las plantas y luego al peso promedio por planta.
En el segundo muestreo además se contó número de chauchas, y se obtuvo el media de chauchas por planta.
Se realizo un control de la densidad de plantas por metro, con una frecuencia de 5 repeticiones con la cual se
hallo la media por tratamiento.
El análisis de los datos se realizó determinando los distintos parámetros de posición y dispersión y prueba de t
para la diferencia de los promedios con relación al testigo.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Cabe destacar que en esta primera etapa solo se evalúa los resultados en la etapa de infectividad, en lo que
respecta al estadio del cultivo este se encontraba en estado vegetativo y principio del reproductivo.
En la siguientes tablas se resumen los datos promedios obtenidos de los dos primeros muestreos y no se
incluyen los del tercero correspondientes a los rendimientos del cultivo.
Tabla 1: Control de nodulación
40
40
Días al muestreo
tratamiento
0
1
140
153
Nº de nódulos
raíz principal
0.68
0.72
peso nódulos
0.0049 0.0047
peso/ nódulo
144
138
Nº de nódulos
raíz secundaria
0.33
0.28
peso nódulos
0.0033 0.0020
peso/ nódulo
284
291
numero total de
nódulo
1.01
1.00
peso total de
nódulos
0.0036 0.0034
peso/ nódulo
40
2
320
80
0
411
80
1
250
80
2
279
1.40
0.0044
281
1.65
0.0040
199
1.07
0.0043
270
1.06
0.0038
168
0.46
0.0016
601
0.63
0.0032
610
0.51
0.0019
520
0.37
0.0022
447
1.86
2.28
1.58
1.43
0.0031
0.0037
0.0030
0.0032
Analizando los resultado del primer muestreo en cuanto al número de nódulos, se observó que el T0 presentó
mayor cantidad de nódulos que el inoculado con Bradyrhizobium japonicum tanto en raíz principal y secundaria, pero
las plantas que fueron tratadas con ambas bacterias superaron al testigo. Tomando ahora la variable de peso de los
nódulos el T0 nuevamente supera a los otro dos.
Tabla 2 Control de nodulación promedio por tratamientos
tratamiento
variable
Media (40 días)
7.84
0
NRP
7.81
0
NRS
15.64
0
NRT
6.51
1
NRP
5.17
1
NRS
11.68
1
NRT
10.59
2
NRP
9.35
2
NRS
19.95
2
NRT
NRP : Número promedio de Nódulos de raíz principal
NRS : Número promedio de Nódulos de raíces secundaria
NRT : Número promedio de Nódulos de raíz total
Media (80 días)
23.13
10.52
33.66
14.50
16.05
30.55
17.58
10.61
28.19
En el segundo muestreo se observa que el número de nódulos por planta en la raíz principal es mayor en el T0,
luego se encuentra el T2 y por último el T1, en cambio observando los de la raíces secundarias los tratamientos T0 y T1
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son similares y menores al T 2. Tomando el peso de los nódulos de la raíz principal el valor mas alto corresponde al T1
y en la raíces secundarias al T0, al igual que en el de nódulos totales.
En cuanto al numero de plantas los tratamientos con inoculante tienen un numero similar y superior al T0 en
un cincuenta %, factor a tener en cuenta dada la mayor germinación y persistencia de las plantas.(tabla 3)
Tabla 3 Control de densidad
Tiempo de tratamiento plamtas/metro
muestreo
0
14.4
40
1
21.8
2
21.2
0
12.5
80
1
17.2
2
16.0
De este trabajo, debido a que falta evaluar el tercer muestreo, no podemos determinar si la interacción de ambas
bacterias generó una respuesta positiva en el cultivo en cuanto a rendimiento (qq/ha) y peso de las 1000 semillas,
objetivo buscado para maximizar las ganancias.
Cabe destacar que los datos de infectividad y nodulación del testigo, dependiendo de la inoculación de la Soja del
cultivo anterior marcan buenos resultados y mayor tolerancia a condiciones desfavorables como sequía y altas
temperaturas, tal cual fueron las condiciones de este ciclo.
CONCLUSIONES
Concluimos con los datos obtenidos que la interacción de ambos organismos favoreció el logro de una mejor densidad
de plantas que perduraron en el tiempo.
Además se observó gran actividad de rizobios de la campaña anterior, que superan en infectividad a los introducidos en
este ensayo.
REFERENCIAS
Ø Weber, C. R. Nodulatión and soybean isolines. Agron. J. 58. 43 - 49
Ø Peticari, A. Et al. 1998. ¿vale la pena inocular la soja?. Situación actual en argentina. Actas III Reunion
Anual de Oleaginosas. Universidad Nacional del Sur. Bahia Blanca. p 183 – 184.
Ø Fernandez Canigia M. V. 2003 .Factores determinante de la nodulación. Dpto. de investigación y desarrollo
NITRAGIN ARGENTINA S.A. p46
Ø Bellone, C.H. – Pedraza, R – Carriso de Bellone, S y Guerrero O. 1997 Influencia de la fertilización
nitrogenada y la inoculación con Azospirillum sobre la acumulación y partición de nitrógeno en trigo.
Biología del suelo. Fijación biológica de nitrógeno. Ed. Bellone p 75 – 79.
Ø Tiem, T. M. – Gaskinns, M.H. and Hubbel, D. H. 1979. Plant growth substances produced by Azospirillum
brasilense and theireffect on the growth of pearl millet (Pennecetum americanum L.) Appl. Environm.
Microbiol. 37. 1016 – 1024.
Trabajo realizado en el marco del * Convenio Cátedra de Microbiología Agrícola – Bilab S.A.
Agradecimiento: Al Establecimiento Del Sr. Poliszuk de La Tigra, Chaco.