Inst. Detecccion de anticuerpos irregulares

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SERVICIO DE SALUD
ARICA Y PARINACOTA
HOSPITAL EN RED
“DR. JUAN NOE C.”
BANCO DE SANGRE Y UNIDAD
DE MEDICINA TRANSFUSIONAL
INSTRUCTIVO
DETECCIÓN DE ANTICUERPOS
IRREGULARES
SGC HJNC AT BS I N° 002
Fecha Última Revisión: Junio 2013
Próxima Revisión: Diciembre 2017
Versión 3
1. OBJETIVO:
Realizar un screening de anticuerpos irregulares en el suero/plasma de aquellos usuarios que el
médico les solicite transfusión de glóbulos rojos, coombs indirecto o envíen solicitud para pruebas
cruzadas con el fin de detectar anticuerpos de significancia clínica.
2. RESPONSABILIDADES:
Responsable ejecución.

Tecnólogo Médico de la Sección de Inmunohematología tiene la responsabilidad de ejecutar
las actividades descritas en el documento.
Responsabilidad del encargado.

Tecnólogo Médico de la Sección de Inmunohematología es el responsable de velar por el
estricto cumplimiento del documento, como también, de efectuar y proponer las
modificaciones que en la práctica se precise.
Responsable del monitoreo y evaluación:

Encargado de Calidad del SCR Banco de Sangre es responsable de revisar los registros, el
logro de indicadores y la evaluación periódica.
3. TERMINOS Y DEFINICIONES

Anticuerpos irregulares: Se le llama anticuerpo irregular porque en contraste con los
anticuerpos del sistema ABO, el cual se encuentra regularmente en todos los individuos
sanos, estos anticuerpos solo se encuentran en algunos individuos.

Screening: es una estrategia aplicada para detectar anticuerpos presente en el plasma de los
individuos.






TM: Tecnólogo Médico.
TPM: Técnico Paramédico.
GSL: Glóbulos sin leucocitos.
PBS: (phosphate buffer saline) = Buffer fosfato salino.
LISS: (low ionic strengh-saline) = Solución salina de baja fuerza iónica.
IgG: Inmunoglobulina gamma.
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La versión vigente se encuentra en sitio web del Hospital www.hjnc.cl.
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4. REFERENCIAS.
Manual de Técnicas de Laboratorio – Banco de Sangre – Universidad de Tarapacá
5. DESARROLLO.
5.1 Descripción.
1. Detección de anticuerpos irregulares en tarjetas con gel.
a)
b)
c)
d)
e)
f)
g)
h)
i)
j)
k)
Tener dos tubos de vidrio (Khan).
Marcar el primer tubo con I (uno en romano) y el segundo tubo con II (dos en romano)
Dispensar en cada tubo de Khan, 500 uL de solución LISS.
Colocar 5 uL de GR comercializados I en el tubo I y 5 uL de GR comercializados II en el
tubo II. (Actualmente se utiliza el Panell Cell con dos células de antigenicidad conocida)
Mezclar.
Colocar 50 uL de cada uno de los dos tubos en un pocillo previamente marcado en la
tarjeta de gel.
Sobre esto, dispensar 25 uL de suero/plasma del usuario.
Incubar 15 minutos a 37°C.
Centrifugar por 10 minutos en centrifuga para geles.
Realizar lectura:
- Negativo (-)  no se observa aglutinación en la columna.
- Positivo +  se observa aglutinación en la columna.
NOTA: la positividad se informa con cruces de acuerdo a la intensidad +, ++, +++, ++++.
Interpretar de acuerdo a la lectura:
- Negativo (-)  ausencia de anticuerpos
- Positivo +  presencia de anticuerpos
2. Detección de anticuerpos irregulares en tubo
a)
b)
c)
d)
Tener dos tubos de vidrio (Khan).
Marcar el primer tubo con I (uno en romano) y el segundo tubo con II (dos romano)
Dispensar en cada tubo de Khan, 500 uL de solución LISS.
Colocar 5 uL de GR comercializados I en el tubo I y 5 uL de GR comercializados II en el
tubo II. (Actualmente se utiliza el Panell Cell con dos células de antigenicidad conocida)
e) Mezclar.
f) En otros tubos de Khan previamente marcados, depositar dos gotas de suero/plasma
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del usuario.
g) Colocar 1 gota de la mezcla de GR comercializados con la solución LISS en los tubos
respectivos que contienen suero o plasma (punto f).
Incubar 20 minutos a 37°C.
Lavar con solución PBS o suero fisiológico tres veces cada tubo.
En el último lavado, eliminar todo el sobrenadante.
Agregar 2 gotas de antisuero IgG (Antisuero de Coombs).
Centrifugar a 3500 rpm por 15 segundos.
Realizar lectura:
- Negativo (-)  no se observa aglutinación en el fondo del tubo.
- Positivo +  se observa aglutinación en el fondo del tubo.
NOTA: la positividad se informa con cruces de acuerdo a la intensidad +, ++, +++, ++++.
l) Interpretar de acuerdo a la lectura:
- Negativo (-)  ausencia de anticuerpos
- Positivo +  presencia de anticuerpos
h)
i)
j)
k)
l)
m)
* Finalmente se registran los resultados de los Anticuerpos Irregulares realizados en Solicitud
de Transfusión (SGC HJNC AT BS R Nº001), Hoja Transfusional (SGC HJNC AT BS R Nº002),
Libro de Transfusiones (SGC HJNC AT BS R Nº003) y/o en Libro de Pruebas Cruzadas y
Anticuerpos Irregulares (SGC HJNC AT BS R Nº026).
5.2 Materiales y equipamiento.












Tubos de vidrio (Khan).
Tarjetas en gel (Bio – Type AHG).
Incubadora a 37°C (A&B).
Centrifuga para tarjetas de gel (Horizontal Centrifuge Modelo 755).
Solución de LISS.
Suero del paciente o donante de sangre.
Glóbulos rojos comercializados (Panell CELL).
Antisuero Poliespecífico IgG-Anti complemento (suero de Coombs).
Solución de PBS.
Centrífuga para tubos Khan.
Pipetas plásticas Pasteur.
Guantes.
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5.3 Indicadores de Monitoreo y Evaluación.
Nombre: Porcentaje de screening de anticuerpos irregulares realizados en usuarios
transfundidos con GSL con solicitud de transfusión de carácter “urgente”.
Indicador:
Número de exámenes de anticuerpos irregulares en usuarios
transfundidos con GSL con carácter de “urgente”
Número total de usuarios transfundidos con GSL con carácter de” urgente” en
el mismo período
Fuente:
Solicitud de Transfusión.
Periodicidad:
Mensual
X 100
Umbral de cumplimiento : 100 %
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5.4 Flujograma:
Anticuerpos irregulares
(Técnica en gel)
TM marca ambos
tubos con I y II
romanos
TM coloca en cada
tubo 500 uL de
LISS
TM lee
Interpretar
Tener dos
tubos Khan
TM agrega 5 uL de
GR comercializados I
y II respectivamente
TM centrifuga en
equipo especial para
tarjeta de geles por
10 minutos
Mezclar
TM incuba
20 minutos
a 37°C
TM coloca de esta
mezcla 50 uL en el
pocillo
previamente
marcado en la
tarjeta de gel
TM agrega
25 uL de
suero/plasma
del usuario
GR: Glóbulos Rojos
TM: Tecnólogo Médico
LISS: Solución Salina de Baja Fuerza Iónica
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Anticuerpos irregulares
(Técnica Tubo)
Disponer de dos
tubos Khan
marcados con I y II
para depositar dos
gotas de suero/
plasma del usuario
TM marca ambos
tubos con I y II
romanos
TM coloca en cada
tubo 500 uL de
LISS
TM agrega dos
gotas de
Antisuero IgG
Tener dos
tubos Khan
TM agrega 5 uL de GR
comercializados I y II
respectivamente
TM elimina
sobrenadante en
último lavado
TM centrifuga a
3500 rpm por 15
segundos
TM agrega una
gota de esta
mezcla a cada
tubo Khan
Mezclar
TM lava con PBS
(realizar este paso
tres veces)
TM lee
TM incuba 20
minutos a 37°C
Interpretar
GR: Glóbulos Rojos
TM: Tecnólogo Médico
PBS: Buffer Fosfato Salino
LISS: Solución Salina de Baja Fuerza Iónica
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6. REGISTROS.
Nombre del Registro
Identificación
Llenado
Acceso
Mantención
Almacenamiento
Solicitud de Transfusión
SGC HJNC AT BS R Nº001
TM, TPM.
Personal del SCR Banco de Sangre
5 años
Sección de Inmunohematología
Nombre del Registro
Identificación
Llenado
Acceso
Mantención
Almacenamiento
Hoja transfusional
SGC HJNC AT BS R Nº002
TM, TPM.
Médicos, TM, Profesionales o técnicos de
enfermería, Profesionales o técnicos de
matronería, TPM de los diferentes servicios.
3 años
Ficha del receptor
Nombre del Registro
Identificación
Llenado
Acceso
Mantención
Almacenamiento
Libro de transfusiones
SGC HJNC AT BS R Nº003
TM, TPM.
Personal del SCR Banco de Sangre
3 años
Sección de Inmunohematología
Nombre del Registro
Libro de Pruebas Cruzadas y Anticuerpos
Irregulares
SGC HJNC AT BS R Nº026
TM, TPM.
Personal del SCR Banco de Sangre
3 años
Sección de Inmunohematología
Identificación
Llenado
Acceso
Mantención
Almacenamiento
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7. DISTRIBUCIÓN.




Dirección.
SCR Banco de Sangre.
Oficina de Asesoría Jurídica.
Oficina de Calidad y Seguridad el paciente.
8. MODIFICACIONES.
Párrafo que se modifica
Término y Definiciones
Descripción
Registros
Página
1
3
7
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