universidad veracruzana

UNIVERSIDAD
VERACRUZANA
FACULTAD DE MEDICINA
VETERINARIA Y ZOOTECNIA
CONSTANTES HEMATICAS PARA CRÍAS DE MANATÍ (Trichechus
manatus manatus) DE HASTA DOS AÑOS DE EDAD EN CAUTIVERIO.
T
E
S
I
N
A
Que para obtener el título de:
MEDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA
PRESENTA
FABIÁN FRANCISCO VANOYE LARA
ASESOR
M.V.Z. MIGUEL CANALES RUBÍO
H. VERACRUZ, VER.
ENERO 2002
CONSTANTES HEMATICAS PARA CRÍAS DE MANATÍ (Trichechus
manatus manatus) DE HASTA DOS AÑOS DE EDAD EN CAUTIVERIO.
AGRADECIMIENTOS
Mis mas sinceros agradecimientos a:
UNIVERSIDAD VERACRUZANA
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y
ZOOTECNIA
ACUARIO DE VERACRUZ, A.C.
MI FAMILIA
SILVIA Y PABLO
CADA UNA DE LAS PERSONAS QUE
INTERVINIERON EN LA REALIZACIÓN DEL
PRESENTE TRABAJO
ÍNDICE GENERAL
RESUMEN
I.- INTRODUCCIÓN
Página
1
II.- ANTECEDENTES
2
III.- OBJETIVO GENERAL
3
IV.- OBJETIVOS PARTICULARES
3
V.- MARCO TEÓRICO
4
5.1 DESCRIPCIÓN DE LA ESPECIE
4
5.2 ORIGEN Y EVOLUCIÓN
7
5.3 CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA
7
5.4 PAPEL DEL MANATÍ EN EL ECOSISTEMA
9
5.5 DISTRIBUCIÓN Y HÁBITAT
10
5.6 ASPECTOS ANATÓMICOS Y FISIOLÓGICOS
12
5.6.1 TEGUMENTO
12
5.6.2 SISTEMA EXOCRINO
12
5.6.3 SISTEMA ÓSEO
13
5.6.4 SISTEMA RESPIRATORIO
14
5.6.5 SISTEMA DIGESTIVO
15
5.6.6 SISTEMA CIRCULATORIO
20
5.6.6.1 FÓRMULA ROJA
22
5.6.6.2 FÓRMULA BLANCA
23
5.6.6.3 QUÍMICA SANGUÍNEA
24
5.6.7 SISTEMA UROGENITAL
26
5.6.8 SISTEMA ENDOCRINO
27
5.6.9 SISTEMA NERVIOSO Y ÓRGANOS DE
LOS SENTIDOS
27
5.7 ETOLOGÍA
28
5.8 NUTRICIÓN Y HABITOS ALIMENTICIOS
30
5.9 REPRODUCCIÓN
33
5.10 ENFERMEDADES Y SU CONTROL
36
5.11 CONTENCIÓN Y MANEJO
39
5.12 CAUTIVERIO
46
5.13 ACUARIO DE VERACRUZ
47
VI.- MATERIAL Y MÉTODOS
50
6.1 ALOJAMIENTO
51
6.2 PLAN DE TRABAJO
53
6.3 PROTOCOLO DE ALIMENTACIÓN
53
6.4 PROTOCOLO DE MANEJO
56
6.5 PROTOCOLO DE SALUD
59
VII.- RESULTADOS
61
VIII.- DISCUSIÓN
78
IX.- CONCLUSIONES
79
X.- BIBLIOGRAFÍA
81
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1. Manatí general.
Página
4
Figura 2. Uñas de manatí.
5
Figura 3. Poros genitales hembra y macho.
6
Figura 4. El manatí en el ecosistema.
9
Figura 5. Distribución Mundial de los Sirenios.
10
Figura 6. Distribución Nacional del Trichechus manatus manatus
11
Figura 7. Madre amamantando a su cría.
12
Figura 8. Huesos del manatí.
14
Figura 9. Corte transversal del estómago.
17
Figura 10. Aspecto general del sistema digestivo.
20
Figura 11. Glóbulo rojo de manatí.
23
Figura 12. Glóbulos blancos de manatí.
24
Figura 13. Ojo de manatí.
28
Figura 14. Momento del parto de manatí.
35
Figura 15. Manejo de una cría.
40
Figura 16. Sitios de punción para la toma de sangre.
43
Figura 17. Proceso progresivo para obtener la muestra de sangre.
45
Figura 18. Acuario de Veracruz, A.C. vista aérea.
47
Figura 19. Vista de la Laguna de Alvarado, Ver.
50
Figura 20. Cuarentena del Acuario.
51
Figura 21. Pecera #8 del Acuario.
Figura 22. Cría tomando leche con mamila.
52
54
Figura 23. Crías comiendo vegetales.
56
Figura 24. Pesado de manatí.
57
Figura 25. Registro morfométrico.
58
Figura 26. Toma de sangre.
59
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla #1 Plantas acuáticas consumidas por los manatíes.
Página
32
Tabla #2 Ración diaria para manatíes en el Miami Seaquarium.
33
Tabla #3 Requerimientos para alojar manatíes en cautiverio.
47
Tabla #4 Registro de muestras de sangre.
60
Tabla #5 Valores encontrados para la hembra Silvia.
61
Tabla #6 Valores encontrados para el macho Pablo.
62
ÍNDICE DE GRÁFICOS
Gráfico #1. Consumo de leche durante la lactancia de las crías.
Página
55
Gráfico #2. Consumo de vegetales durante el estudio.
56
Gráfico #3. Peso de las crías durante el estudio.
57
Gráfico #4. Registro de la talla (largo total del cuerpo).
58
Gráfico #5. Comportamiento gráfico de los glóbulos rojos de Silvia
y Pablo.
63
Gráfico #6. Comportamiento gráfico de la hemoglobina de Silvia
y Pablo.
64
Gráfico #7. Comportamiento gráfico del hematocrito de Silvia
y Pablo.
65
Gráfico #8. Comportamiento gráfico del volumen globular medio
de Silvia y Pablo.
66
Gráfico #9. Comportamiento gráfico de la concentración media
de hemoglobina de Silvia y Pablo.
67
Gráfico #10. Comportamiento gráfico de los glóbulos blancos de
Silvia y Pablo.
68
Gráfico #11. Comportamiento gráfico de los segmentados de Silvia
y Pablo.
69
Gráfico #12. Comportamiento gráfico de los linfocitos de Silvia y
Pablo.
70
Gráfico #13. Comportamiento gráfico de los monocitos de Silvia y
Pablo.
71
Gráfico #14. Comportamiento gráfico de las plaquetas de Silvia y
Pablo.
72
Gráfico #15. Comportamiento gráfico de la glucosa de Silvia y
Pablo.
Gráfico #16. Comportamiento gráfico de la urea de Silvia y Pablo.
73
74
Gráfico #17. Comportamiento gráfico de la creatinina de Silvia y
Pablo.
75
Gráfico #18. Comportamiento gráfico del ácido úrico de Silvia y
Pablo.
76
Gráfico #19. Comportamiento gráfico del colesterol de Silvia y
Pablo.
77
ÍNDICE DE ANEXOS
Anexo 1. Lista de parásitos en sirenios.
Página
85
Anexo 2. Lista de fármacos comúnmente utilizados en manatíes.
87
Anexo 3. Formato de consumo de leche.
90
Anexo 4. Formato de consumo de vegetales.
91
Anexo 5. Formato de medidas morfológicas.
92
Anexo 6. Formula láctea inicial.
93
Anexo 7. Formula láctea a mitad del estudio.
94
Anexo 8. Formula láctea final.
95
RESUMEN
Se determinaron las constantes hematicas (hemograma y química
sanguínea) a las crías de manatí (una hembra y un macho) mantenidas
en el Acuario de Veracruz, el estudio abarca de Marzo de 1998 a Marzo
del 2000. Durante este periodo se realizaron cambios en la alimentación
de los organismos, ya que cuando llegaron (recién nacidos) se les
proporciono una leche especial para mamíferos cada tres horas la cual
tuvo modificaciones en cuanto a la concentración de nutrientes, así
como en el volumen ofrecido y poco a poco mediante pruebas de
aceptación se fueron ofreciendo diferentes tipos de frutas y vegetales
(lechuga larga, lechuga romana, acelga, alfalfa, berro, col, ejote,
espinaca, germinado de soya, jitomate, manzana, papa, pepino y
zanahoria) para conformar su dieta sólida, ya que ellos son herbívoros;
se llevo un control en el registro del peso y la talla corroborando con ello
el buen desarrollo de las crías. En lo que se refiere al aspecto de la salud
y como parte medular de este estudio, tenemos que se realizaron 13
muestreos para la hembra y 15 para el macho en los dos años. Bajo el
análisis de estadística descriptiva se encontraron los promedio o medias
para glóbulos rojos, hemoglobina, hematocrito, volumen globular medio,
concentración media de hemoglobina, leucocitos, diferencia leucocitaria,
plaquetas, glucosa, urea, creatinina, ácido úrico y colesterol; y por lo
tanto se consideran las constantes hematicas para crías de manatí del
Acuario de Veracruz.
I.- INTRODUCCIÓN
Los avances médicos y la evolución científica han favorecido la
creación de una serie de ramas, que apoyan a la medicina, y una de
ellas es la Hematología Clínica, área en la cual se pretende conocer a
través de estudios de la sangre, los estados de salud y enfermedad de
las especies animales, siendo una de estas pruebas el Hemograma, la
que permite en un momento dado determinar o bien apoyar un
diagnóstico presuntivo que muy probablemente puede ser el caso de
una anemia o bien una discrasia sanguínea de la serie blanca. También
se cuenta con el apoyo de la Química sanguínea, para determinar
alteraciones funcionales y/o metabólicas.
Aunque este tipo de estudios en animales de fauna silvestre, es
poco utilizado, ya sea por el alto costo, por la falta de recursos o por la
escasez de personal capacitado en el área, son de mucha importancia
clínica.7
El establecimiento de los parámetros hemáticos de una especie es
muy importante, pues existe una diversidad de factores cotidianos que
influyen de manera directa sobre los compuestos presentes en sangre;
tales como la alimentación, el consumo de agua, la actividad física, la
jerarquía social, el estado reproductivo y otros como la dificultad o
resistencia a la extracción de la sangre, estrés, ejercicio, sedación,
alteraciones anatómicas, fisiológicas y el manejo, entre otros. De tal
forma que cada uno de estos desempeña un papel determinante en la
presentación de algunas variaciones de los niveles sanguíneos.
A partir del conocimiento de la cantidad y calidad de los
elementos, tanto de la serie eritrocítica como leucocitaria, es posible
detectar alteraciones numéricas y/o morfológicas que permiten inferir el
tipo de respuesta por parte de la médula ósea, para así implementar la
terapéutica más apropiada en cada caso.19
Siendo el Acuario de Veracruz la primera institución que alberga
crías de manatí, este estudio representa los primeros datos obtenidos de
dos crías mantenidas en cautiverio en México desde el mes y medio de
edad hasta los dos años, y se presentan como inicio de una nueva línea
de investigación para la especie en México por lo que pueden llegar a
presentarse como resultados preliminares.
1
II.- ANTECEDENTES
Las investigaciones que se han realizado en México sobre el
manatí se han dirigido especialmente a su distribución. En México hay
pocos sitios donde se han mantenido manatíes en cautiverio, pero es
importante mencionar que la especie Trichechus manatus es la que
cuenta con mayor número de organismos en cautiverio en acuarios y
zoológicos en el mundo, con un total aproximado de 30 ejemplares
distribuidos en 16 o 17 instituciones con lo que se demuestra la
posibilidad de mantenerlos en cautiverio y lograr su reproducción,
fomentando las investigaciones en esta especie.12
Algunos de los animales que han sido mantenidos en cautiverio
cuentan con registros médicos nulos o escasos, y en ocasiones se
encuentran esparcidos o incompletos.
Los únicos reportes de mantenimiento en cautiverio en México de
manatí han sido en el zoológico San Juan de Aragón en la década de los
setenta (com. per. Carlos Medina) y en el Instituto de Historia Natural
dentro del zoológico Miguel Álvarez del Toro en Tuxtla Gutiérrez,
Chiapas, de 1974 a 1989 pero se trataba de organismos adultos.11,12
También se han mantenido en semicautiverio ejemplares en los
canales de Xochimilco, Estado de México y en Valsequillo, Puebla
durante los setenta con el fin de controlar al Lirio acuático, pero los
manatíes murieron por las bajas temperaturas del agua, no teniendo
además reportes biométricos y hemáticos.
En el Centro de Convivencia Infantil (CCI) en Jonuta, Tabasco se
tiene conocimiento de 6 a 8 organismos recluidos en una laguna
artificial, sin que se lleve un control de los mismos.12,16
En el año 1995 fueron recluidos 5 ejemplares en las instalaciones
del Centro de Interpretación de la Naturaleza “Yumka´” en Tabasco por
la sequía, así como de una cría a finales de 1998. Por un acuerdo
internacional el parque Eco – arqueológico “Xcaret” en Quintana Roo
recibió una cría huérfana de Belice.12
Los reportes sanguíneos existentes de la especie en México son
solo de algunos animales adultos capturados en su medio natural (Bahía
de Chetumal en Quintana Roo) (com. per. Benjamín Morales) y de las
crías del zoológico en Yumka´ Tabasco (com. per. Fabián Rey) y de
Xcaret Quintana Roo (com. per. Roberto Sánchez).
2
III.- OBJETIVO GENERAL
Determinar las constantes del hemograma y la química sanguínea
(glóbulos rojos, hemoglobina, hematocrito, volumen globular medio,
concentración media de hemoglobina, leucocitos, diferencia leucocitaria,
plaquetas, glucosa, urea, creatinina, ácido úrico y colesterol) para crías
de manatí de hasta dos años de edad.
IV.- OBJETIVOS PARTICULARES
Llevar un registro de los valores hematológicos (hemograma y
química sanguina) de las crías durante el periodo de estudio.
Hacer la evaluación hematológica de los resultados obtenidos.
Conformar la base de datos para crías de manatí (Trichechus
manatus manatus).
Servir como base para los futuros centro, zoológicos o acuarios
donde se llegaran a mantener organismos huérfanos (crías) rescatados
o recién nacidos.
Contribuir al conocimiento de la especie en cautiverio.
3
V.- MARCO TEÓRICO
5.1 DESCRIPCIÓN DE LA ESPECIE
También se le conoce como manatí del Caribe o Manatí de las
Antillas. Su nombre científico proviene del vocablo latín, Trichechus, que
se refiere a los pequeños pelos o cerdas esparcidas sobre su cuerpo, y el
vocablo manatus se refiere a la característica común de los mamíferos
de amamantar a sus crías. Figura 1.
Los antiguos mexicanos de habla náhuatl, lo denominaron
“Tlacamichin” que significa pez-hombre (tlacatl-micitl). Los mayayucatecos lo denominan “chil-bek” que significa pescado grande de la
mar.12, 14
También se considera del vocablo griego Tri = tres, y chechus =
uñas: tres uñas.1,B
La palabra “manatí” en la lengua indígena caribeña significa “con
mamas”.A
Figura 1 Manatí general.
El manatí es un mamífero acuático de cuerpo grande y fusiforme;
de color gris parduzco, prácticamente no tiene pelo excepto por unos
cuantos bigotes o vibrisas que le cubren el hocico y por finos pelos
dispersos en el dorso. La cabeza es de forma piramidal, no tiene un
cuello aparente por lo que la cabeza se une directamente al tronco y los
movimientos de esta son limitados, las extremidades anteriores están
4
modificadas en aletas muy flexibles con presencia de tres uñas planas y
redondas en los extremos con las que camina por el fondo, sujeta,
abraza y toca a otros manatíes o a sus alimentos. Figura 2.
Figura 2 Uñas de manatí.
Debajo de las extremidades la hembra presenta una pequeña teta
con la que alimenta a sus crías; las extremidades posteriores se han
fusionado en una aleta caudal con forma de remo que está aplanada
dorso - ventral constituyéndose en su propulsor.
El dimorfismo sexual no es aparente y solo se manifiesta por la
posición de la abertura genital (también llamado poro); en los machos,
la distancia entre ésta y el ano es mayor que en las hembras. Figura 3.
Sus ojos son extremadamente pequeños, redondeados de un músculo
en forma de esfínter que hace las veces de los párpados (ya que no los
tienen); poseen una delgada membrana translúcida que les permite ver
mejor bajo el agua y en condiciones de baja luminosidad. Los orificios
auditivos se encuentran situados detrás de los ojos y apenas son
perceptibles, poseen un agudo sentido del oído.12
Los manatíes producen un sonido corto y agudo con la laringe que
puede ser escuchado por el ser humano, y son capaces de percibir, a su
vez, sonidos de frecuencias muy bajas14 estos sonidos son pues
chirridos, chillidos y gorjeos para mantener contacto entre la madre y su
cría, y en el periodo de reproducción.
5
Figura 3 Poros genitales hembra y macho.
Estos mamíferos generalmente miden en estado adulto alrededor
de tres metros, siendo la máxima longitud registrada de 4.6 m con peso
entre 500 y 600 Kg en promedio y consumen cerca de 35 a 40 Kg de
alimento diariamente. Carecen de incisivos y caninos funcionales,
aunque los jóvenes presentan un par de incisivos vestigiales que no
emergen; los adultos generalmente presentan 6 o 7 dientes
molariformes en cada mandíbula, es decir un total de 24 a 28 piezas.
Son animales que en vida libre se ha estimado que pueden llegar
a vivir entre 50 y 60 años.12,14
Es 100% vegetariano y en vida libre se alimenta de una gran
variedad de plantas del fondo, semi-sumergidas o flotantes y
ocasionalmente de pastos que llegan a las orillas del agua 14. Las plantas
consumidas por estos organismos son la hierba de la tortuga (Talassia
testudinum), y hierba del manatí (Sysigodium filiforme),9 así como más
de 30 especies de algas.
Aproximadamente comen del 7 a 10 % de su peso corporal al día.
Cuando son pequeños se alimentan de la leche de su madre que
los amamanta por dos años. La leche contiene un alto porcentaje de
lípidos y no contiene hidratos de carbono.24
6
Su periodo de gestación dura trece meses y tiene una sola cría
cada cuatro a cinco años, llegando a tener en raras ocasiones dos. 12
5.2 ORIGEN Y EVOLUCIÓN:
Los miembros del orden sirenia, llamados sirénidos, tienen la
particularidad de ser los únicos mamíferos acuáticos herbívoros
adaptados para vivir toda su vida dentro del agua, por esta razón,
comparten similitudes en la forma de su cuerpo y en ciertas
adaptaciones especificas al hábitat con otros grupos de mamíferos
marinos como son los cetáceos (misticetos y odontocetos), los fócidos,
los otáridos y los mustélidos, aunque no tiene una relación ancestral con
ellos. Su evolución no se conoce completamente, pero se sabe que los
sirenios se originaron en el Viejo Mundo (Eurasia o África), a partir de
mamíferos herbívoros terrestres. Los registros fósiles más antiguos son
del Eoceno, hace 45 a 55 millones de años.12,22
Los sirenios representan uno de los cuatro extensos Ordenes de
mamíferos que son algunas veces mezclados juntamente como los
“subungulados”, una serie de Ordenes que pueden ser tomados en
cuenta evolutivamente inusual de un ungulado ancestral primitivo. Los
otros subungulados incluyen los Ordenes Prosbocidea (elefantes),
Hyracoidea (ratón de campo) y Tubulidentara (oso hormiguero). Ciertas
características anatómicas compartidas por muchos subungulados
incluyen características dentarias, falta de una clavícula (collar de
hueso) y la presencia de uñas o pezuñas datan garras primitivas. Todos
los subungulados excepto los osos hormigueros que come hormigas y
termitas son herbívoros.22
5.3 CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA
Sirenios: La palabra sirénidos proviene de Sirenas. La historia de
estas es muy antigua y popular, en la mitología antigua es mencionada
en las culturas de Medio Oriente y fue posiblemente originada por los
navegantes que pasaban mucho tiempo en embarcaciones, viendo a los
manatíes como “Damas” de la época, recordando sus peinados y
caireles, las algas que colgaban de sus cabezas al salir a respirar, así
como verlos amamantando a sus crías abrazadas hacia sus pechos.2
El orden de los sirenios esta compuesto por dos familias:
7
Familia Dugongidae, que incluye el Dugon (Dugong dugong) y la
extinta Vaca Marina de Steller (Hydrodamalis gigas).
Familia Trichechidae, que incluye al Manatí del Oeste de la India
(Trichechus manatus), el Manatí del Amazonas (Trichechus inunguis) y
el Manatí del Oeste de África (Trichechus senegalensis).9
Hatt (1934) distingue dos subespecies para T. manatus (T. m.
manatus y T. m. latirostris) aunque no define exactamente los limites de
distribución. Esta subdivisión provocó polémica ya que autores como
Moore (1951) y Hartman (1979) se muestra escéptico pues opinan que
la capacidad de dispersión del manatí y su amplio ámbito hogareño
favorecen el intercambio entre las diferentes poblaciones.
Sin embargo hay diferencias en el cráneo que aunque son mínimas
pueden justificar la división sub-especifica (Ronald et al., 1978).
Colmeneros y Hoz (1985 en prensa) después de analizar la validez de
esta subdivisión y la distribución de las subespecies consideran que en
México se encuentra la subespecie T. m. manatus y que el límite de
distribución es la parte norte del Golfo de México.
Phylum: Cordata
Subphylum: Vertebrata
Clase: Mammalia
Orden: Sirenia
Familia: Trichechidae
Genero: Trichechus
Especie: Trichechus manatus
Subespecie: Trichechus manatus manatus
El manatí en México es considerado desde julio de 1975 como
especie en peligro de extinción por la Convención Internacional de
Especies Amenazadas de Fauna y Flora Silvestre (CITES) y desde 1982
como vulnerable por la Unión Internacional para la Conservación de la
Naturaleza (UICN) y en mayo de 1991 se establecen los criterios
ecológicos CT-CERN-001-91 que determinan las especies raras,
amenazadas, en peligro de extinción o sujetas a protección especial y
8
sus endemismos de la Flora y Fauna terrestres y acuáticas en la
Republica Mexicana.12
5.4 PAPEL DEL MANATÍ EN EL ECOSISTEMA
No se puede dejar de reconocer el valor significativo que tiene el
manatí en un ambiente acuático, el cual puede mostrarse a través de un
diagrama que sitúa a éste dentro del ecosistema. Figura 4. El ciclo de
producción de las algas y plancton está directamente relacionado con la
energía solar y los nutrientes disueltos en el agua. Un herbívoro del
tamaño del manatí, que puede comer 30 o 40 Kg de plantas por día y
devolver aproximadamente el 40% de este producto como nutrientes
puros otra vez al agua, proporciona la base de un ecosistema estable y
más productivo. Precisa recordar que los manatíes son los mayores
herbívoros existentes en los ecosistemas acuáticos dulceacuícolas y que
en su ausencia la mayor productividad neta, eventualmente llega a ser
detritus.6 además, esta especie se considera como un agente contra
malezas acuáticas (jacinto de agua o lirio acuatico12) y como regulador
biológico de plagas acuáticas asociadas a las plantas en ciertas aguas
del trópico, como sucede con los mosquitos.14
Figura 4 El manatí en el ecosistema. Tomado de Colmenero R., L. 1984.
9
5.5 DISTRIBUCIÓN Y HÁBITAT
El manatí se encuentra en aguas tropicales y subtropicales, dulces
y marinas (estuarios, ríos, arroyos, lagos, lagunas y cenotes)3 desde la
Florida, Antillas, costa Atlántica de México, Centroamérica, Colombia,
Venezuela y Norte de Brasil. Figura 5.
En México están confinados a una franja que va desde las costas
de Tamaulipas, Veracruz, Tabasco, Campeche, Chiapas, Península de
Yucatán y Quintana Roo hasta la frontera con Belice y especialmente en
los ríos y estuarios principales de la Laguna de Alvarado, Nautla,
Coatzacoalcos, Papaloapan, Grijalva, Usumacinta y Palenque. 12 Figura
6.
Arriaga (1993) enlista los autores con estudios poblacionales del
manatí en México, detallando las localidades en los estados de Tabasco,
Campeche, Chiapas, zona costera del Caribe y Veracruz.
Se ha calculado que existen alrededor de 250 de estos animales
en el estado de Quintana Roo, de estos 90 a 130 se encuentran en la
bahía de Chetumal, que fue declarada en 1996 por el Gobierno del
Estado como Área Natural Protegida, con la categoría de zona sujeta a
conservación ecológica y santuario del manatí.12
Figura 5 Distribución Mundial de los Sirenios. Tomado de Zeiller, W.
1992.
10
Figura 6 Distribución Nacional del Trichechus manatus manatus.
Tomado de INE 2000.
La turbidez del agua parece no tener efecto sobre el manatí, ya
que se les encuentra en aguas totalmente transparentes como en aguas
extremadamente turbias 3,11; por lo general nadan a una profundidad de
1 y 3 metros. La mayor profundidad registrada es de 10 m y la menor 1
m normalmente utilizan pasadizos entre la vegetación sumergida,
aparentemente, las corrientes de hasta 6 km/hr no tienen efecto sobre
los animales y los desbordamientos de los ríos en época de lluvias
permiten que algunos individuos se aventuren a sitios antes
inaccesibles.3
En aguas tropicales normalmente se les encuentra en sitios con
temperaturas entre los 24 y 26ºC,3 los manatíes en vida libre son
sensibles al agua fría, en cautividad se recomienda tenerlos en rangos
de temperatura entre los 23º y 29ºC, mantenidos por debajo de los
20ºC se ha observado cambios en su comportamiento y perdida del
apetito9,14. Temperaturas arriba de los 31ºC puede resultar una
depresión y perdida del apetito en huérfanos jóvenes. Los individuos
adultos pueden adaptarse a variaciones un poco altas de temperaturas
poco más de 32 ºC.9
11
5.6 ASPECTOS ANATÓMICOS Y FISIOLÓGICOS
5.6.1 Tegumento
El pelo es corto y fino, tiene una epidermis gruesa y abundante
grasa. El grosor de la capa subcutánea varia de 1.5 a 4 cm. La piel del
cuello esta marcada por unos cuantos pliegues al igual que en otras
regiones de la parte ventral del abdomen, siendo esta de textura rugosa
y de color gris, aunque generalmente se les ve de color café por las
algas que se adhieren a su cuerpo. Al nacer las crías presentan un color
gris oscuro, pero la piel se va aclarando con el paso del tiempo hasta
adquirir el tono característico de los adultos.14 La piel en general es de
textura similar a la del elefante con pelos individuales separados.9
5.6.2 Sistema exocrino (Glándula mamaria)
Poseen un par de glándulas mamarias en la región torácica, que se
inician con un solo pezón en cada una de las axilas. Existe una leyenda
de que la hembra amamanta a su cría en posición vertical abrazándola
con su aleta y su cabeza fuera del agua. El amamantamiento en realidad
se lleva a cabo en una posición horizontal, bajo el agua y sin abrazarlo.
La hembra extiende su aleta lateralmente y hacia delante, por esta
razón la cría se pega a la axila de su madre para lactar. No existe
preferencia por un pezón en especial.14 Figura 7.
La leche natural del manatí contiene una distribución de macro
nutrientes aproximada de 80% de lípidos, 18% de proteínas y
solamente 2% de cabohidratos (com. per. Walsh, M. 1998). Cadenas
cortas y medianas de triglicéridos predominan en la porción de grasa y
numerosos azucares están presentes.9
Figura 7 Madre amamantando a su cría. Foto de Doug Perrine.
12
5.6.3 Sistema óseo
Esta constituido por huesos que se caracterizan por ser muy
densos, paquiostoticos, siendo esta condición especialmente en el
vértice del cráneo.
Existe una marcada ausencia de osteoclastos en los huesos y de
este modo hay una supresión en la reabsorción del hueso. No hay
formación de médula ósea en las costillas y huesos largos. Existe un
retardo considerable en la osificación endocondrial, de tal modo que se
da un retardo en la maduración ósea por lo que los huesos permanecen
relativamente cortos.
La peculiar y característica forma del cráneo se debe
principalmente al grueso arco zigomático, a la posición muy rostral de
las orbitas, a la larga depresión nasal y a la inclinación ventral del
premaxilar.
Los cuerpos de las vértebras cervicales están comprimidos cráneocaudalmente y ocasionalmente están anquilosadas. Tiene 6 vértebras
cervicales, 17-18 vértebras torácicas, no más de 3 vértebras sacras y
aproximadamente 20 vértebras caudales. El ligamento nucal entre la
columna vertebral esta muy bien desarrollado y es muy elástico.
Carecen de clavículas. Las costillas (17-18) son gruesas y pesadas, con
una estructura densa. Se ha sugerido que las costillas tienen una acción
de apoyo, manteniendo al animal en el agua. El hueso continua su
calcificación hasta la edad adulta. Figura 8.
Los miembros toráxicos son largos, tiene forma de paleta y los
usan para maniobras de gran efectividad en el impulso con un patrón
pentadáctilo de hueso, estas extremidades son móviles y además de ser
usados para el equilibrio pueden mover las plantas hacia la boca cuando
se están alimentando. Las uñas son rudimentarias y están presentes en
las puntas de los dedos segundo, tercero y cuarto.
13
Esqueleto. Tomado Dierauf, L. A. 1990
Figura 8 Huesos del manatí.
Carecen de miembros posteriores
El nado es lento y solamente lo realizan con la cola y la parte
caudal del cuerpo, aunque a veces nadan usando solo los miembros
toráxicos. El ilion y el isquion están presentes pero son muy reducidos.
El hueso pélvico es un vestigio, que ha dado origen al hueso peneal en
los machos. No existe un verdadero sacro. El hueso de la cadera esta
representado únicamente por un hueso irregularmente triangular con
extremos cartilaginosos.
5.6.4 Sistema respiratorio
La nariz es corta y se ve como un morro. Las dos aberturas
nasales son semicirculares y tiene un diámetro de 1.5 cm, están
situadas sobre o detrás de la punta de la parte dorsal del morro, dichas
aberturas son valvulares lo que permite que se cierren cuando el animal
se sumerge.
Como todo mamífero, el manatí necesita respirar fuera del agua,
por lo que cada 2 a 3 minutos va a la superficie para intercambia aire.
En situaciones especiales puede mantenerse sumergido, sin salir a
respirar hasta por 20 minutos.
Existe un diafragma delgado que separa los pulmones de la
cavidad abdominal.
Los pulmones son simétricos, carecen de lobulaciones y tiene
pocos surcos sobre sus bordes, están envueltos por una pleura
altamente vascularizada. 14 Llegan a medir mas de un metro de longitud
en un animal adulto.3 Vanoye (1999) en la necropsia de una cría de
14
manatí reporta el pulmón derecho con 52.5 cm de longitud y el
izquierdo con 49 cm de longitud y una gran congestión.
Los estudios sobre su metabolismo han demostrado que su
consumo de oxígeno en descanso es muy bajo con relación a todos los
mamíferos acuáticos. Su metabolismo es tres veces menor que otros
mamíferos placentarios y es una novena parte más baja que en el
humano en condiciones de reposo.14
Cuando los manatíes respiran, intercambian el 90% del aire de sus
pulmones. Para hacer esto, exhalan muy fuerte cuando su nariz rompe
la superficie del agua, aventando una nube de rocío. Respirar de esta
manera significa que hay mas oxígeno fresco, lo que permite al animal
estar bajo el agua más tiempo.12
5.6.5 Sistema digestivo
El labio superior esta bien desarrollado y probablemente adherido
al hueso, es muy móvil y alargado para sujetar y cortar la vegetación,
en la parte carnosa interna del labio superior hay dos pequeñas áreas de
cerdas duras, como pequeños cepillos de dientes, los cuales conducen el
alimento a la boca. Dentro de la parte anterior de la boca y descansando
sobre las áreas de la sínfisis del premaxilar y debajo de la mandíbula
esta la placa dental callosa, semejante a la placa dental superior de un
bovino o de un ovino. Están cubiertas con papilas cónicas rugosas y
papilas blandas filiformes. La lengua esta adosada hacia el piso de la
boca y no se puede protuir, las glándulas salivales son
sorprendentemente grandes, particularmente las parótidas, las
glándulas sublinguales son pequeñas.
Su formula dental es la siguiente:
2 (I 0/0, C 0/0, P 0/0, M 6/6) = 24
Los dientes son molariformes y selenodontos, rara vez hay mas de
6/6 al mismo tiempo, debido a que solo seis son usados durante su
vida; los dientes tienen crestas transversas y son empleados en
movimientos hacia abajo y hacia delante. Los dientes anteriores son
mudados al ser desgastados. El desplazamiento esta en función de
estímulos mecánicos generados por el consumo de alimentos sólidos y
son reemplazados horizontalmente, por lo que avanzan cranealmente.
15
La epiglotis es rudimentaria, semejante a la de los cetáceos; no
existen aparentemente cuerdas vocales, estas han sido sustituidas por
gruesos cojinetes de ligamentos y tejido fibroelástico.14
La posición de los órganos del aparato gastrointestinal es diferente
a los dispuestos en los mamíferos terrestres típicos, porque el diafragma
de ellos es una corona, mas bien que un plano transverso. El diafragma
esta compuesto estructuralmente de dos hemidiafragmas, cada uno
junto consigo, esto es a lo largo de la vía media sagital de la lamina
central del tendón de los cuerpos vertebrales. El tracto gastrointestinal
es ventral al diafragma horizontal y los pulmones están dorsal al
diafragma.
El tracto gastrointestinal de manatí, puede pesar junto con su
contenido al menos 96 kilos en un adulto grande. El tracto completo
incluyendo el contenido puede contar por arriba del 23% del peso total
del cuerpo. El peso de los órganos que componen el tracto
gastrointestinal, junto con el porcentaje del peso total del cuerpo
representados para cada uno es tomado de 11 manatíes que tenían
contenido en todas las partes del tracto gastrointestinal, en esos datos
se observa que el estómago mas el contenido representa 0.7 – 3.9 %
del peso total del cuerpo, el peso lleno del intestino delgado cuenta por
arriba del 1.4 – 5.6 % del peso total del cuerpo, el peso del intestino
grueso (ciego, colon y recto) junto con el contenido representa 3.4 – 14
% del peso total del cuerpo. Debe considerarse que el largo y espesura
de la pared varia considerablemente en mediciones postmorten; el peso
de los órganos es por lo tanto, indicadores confiables del tamaño
relativo.23
Vanoye (1999) reporta la longitud de un esófago en una cría de
cuatro meses siendo de 32 cm.
El estómago es un saco largo, unilocular en forma de C localizado
entre el esófago y la porción proximal del intestino delgado. La mayor
parte del estómago se encuentra a la izquierda del plano medio sagital.
Aunque solo un saco este presente, el órgano internamente esta dividido
en dos porciones, superior e inferior, por una cresta muscular
prominente, la cual se extiende dentro del lumen desde un punto caudal
a la apertura del esófago hacia el estómago. Esta cresta puede ser al
menos de 19 cm de largo y puede sobresalir al menos 4 cm dentro del
lumen del estomago. Figura 9.
El revestimiento interno del estómago es rosa grisáceo en color.
Las fosas gástricas son visibles, pero no son especialmente prominentes.
16
Cuando el estomago esta distendido con comida, los pliegues
están ausentes excepto en la región pilórica, donde los pliegues están
arreglados longitudinalmente. El estómago no extendido de una cría
preservada tuvo pequeños pliegues.
Los bordes del estómago forman la mayor y menor curvatura,
ambas empiezan y terminan en la abertura esofágica (cardias) y el
píloro respectivamente. El cardias esta localizado aproximadamente a
nivel de la octava vértebra torácica justo a la derecha del plano medio
sagital, hay un esfínter prominente muscular circundante al cardias.
Una prominente “glándula cardiaca” es una glándula digestiva
accesoria que sobresale cranealmente desde la porción craneal de la
curvatura mayor. Langer (1988) refiere esta estructura como “glándula
gástrica”. Esta glándula de forma cilíndrica tiene una sola apertura
dentro del lumen del estómago. El tamaño de la glándula varia
directamente con el tamaño del manatí, pero puede medir al menos 15
cm de largo y 5 cm de ancho y puede pesar al menos 0.72 Kg.
Esófago
Píloro
1996.
Glándula
del
cardias
Cresta
Figura 9 Corte transversal de estómago. Tomado de Reynolds, J.
El intestino delgado de manatí es un tubo muscular que empieza
en el esfínter pilórico y finaliza entre el divertículo cecal corniforme del
ciego del intestino medio a la válvula ileocecal.23 El intestino delgado de
un macho de 2.4 metros de longitud mide 7.6 m.14 Vanoye (1999)
encuentra en una cría de manatí el intestino delgado con 7.85 m de
longitud. Puede exceder 20 m (animales de 6 – 7 m de largo) pero el
alargamiento considerable adicional puede ocurrir durante las
mediciones post mortem.
17
El intestino delgado tiene dos subdivisiones esenciales: la porción
libre, representada por el duodeno, y la porción fija (mesentérica)
compuesta del yeyuno e íleon.23
El duodeno puede ser subdividido en tres porciones: una ancha
ampolla duodenal, dos divertículos duodenales y una porción post
ampollar; la ampolla duodenal es una dilatación larga que esta
inmediatamente distal al esfínter pilórico, en adultos puede medir
aproximadamente 19 cm de diámetro y cerca de 26 cm de largo. Un
débil esfínter está presente en el final distal de la ampolla duodenal. Los
divertículos duodenales son estructuras en forma de sacos con paredes
delgadas y están dorsal y ventral, tanto a la ampolla duodenal proximal
y distal al estómago. Cada divertículo mide de 8 – 10 cm de largo. El
divertículo abre dentro a un canal colector común que drena dentro del
lumen de la ampolla duodenal, aproximadamente 5 cm distal a la
apertura pilórica. El orificio de cada divertículo duodenal es cerca 1.5 cm
de ancho.20
En una cría de manatí se encontró el divertículo dorsal de 5 cm de
largo con 3 cm de ancho y el divertículo ventral de 4 cm de largo por
2.5 cm de ancho (Vanoye 1999).
El duodeno post ampollar es un tubo de cerca 5 cm de diámetro
en el cual los conductos pancreáticos y biliares comunes descargan
independientemente, la mucosa de esta exhibe numerosas crestas
longitudinales.20
El intestino delgado tiene dos capas de células escamosas bajas.14
La porción fija (mesentérica) forma numerosas vueltas o espirales
echando caudal al estómago y la ampolla duodenal. Esas vueltas no
ocupan una posición particular dentro de la cavidad abdominal, haciendo
una relación posicional difícil a definir. La masa de las vueltas es donde,
además, el intestino delgado fijo puede contactar al estómago, riñones,
glándulas adrenales, ciego y colon. Numerosos nódulos linfáticos están
presentes en la unión íleo-cecal.
El intestino grueso esta compuesto por el ciego, el colon y el recto.
El espacioso ciego es un saco localizado entre el intestino delgado
terminal y el colon, la válvula íleocecal tiene un esfínter muscular pero
no hay una válvula colon-cecal, el divertículo corniforme (cuernos
cecales) se extiende cranealmente y a la izquierda del cuerpo del ciego,
este se localiza a la izquierda del hemidiafragma pero vueltas del
18
intestino delgado esta ocasionalmente interpuesto entre el diafragma y
el ciego. Los cuernos cecales tienen paredes musculares muy delgadas.
Los cuernos pueden exceder los 15 – 20 cm de largo, y están
lineados por un blanquecino y pesado doblez de mucosa.
El cuerpo del ciego es en forma de cubo y paredes delgadas.23
Figura 10.
Existen muchas glándulas mucosas en su revestimiento, el cual
también tiene una capa superficial estratificada de células epiteliales
escamosas en lugar de las células columnares que se encuentran en
otros mamíferos. Esta sorprendente modificación del revestimiento
intestinal se relaciona posiblemente a la necesidad de restringir la
absorción de agua. El intestino grueso tiene el doble de diámetro del
intestino delgado y tiene aproximadamente la misma longitud. Mientras
que el intestino grueso mide aproximadamente 5.5 m de longitud.
Vanoye (1999) reporta a la necropsia de una cría de manatí el
intestino grueso con una longitud de 3. 26 m, el ciego de 7.0 cm de
largo por 6.0 cm de ancho, así como el cuerno derecho de 5.0 cm de
longitud por 2.0 cm de ancho y el izquierdo de 4.0 cm de largo por 2.0
cm de ancho. Se dice que tienen protección glandular de las masas
vegetales rugosas que en un herbívoro no rumiante (equino).14
El recto es la porción terminal del intestino grueso. Es
relativamente un tubo corto extendiéndose desde el colon hasta el ano.
La estructura del recto semeja a la del colon, pero la del recto tiene un
diámetro menor que la de éste.23
Los conductos biliares y pancreáticos se abren separadamente
hacia el duodeno.
Poseen una vesícula biliar grande.
El bazo es pequeño con relación al tamaño del animal.14 Se
encontró un bazo de 4.5 cm de largo y 3.0 cm de ancho en una cría de
manatí (Vanoye 1999).
El hígado es trilobulado y ocupa una gran parte de la cavidad
abdominal. 14 Vanoye (1999) reporta un hígado con un peso de 400 gr y
de 15.0 cm de largo por 15.0 cm de ancho.
19
Figura 10 Aspecto general del sistema digestivo. Tomado de
Reynolds III, J. 1991.
5.6.6 Sistema circulatorio
En este abunda un tejido reticular llamado “rete mirabilis"
parecido al de una malla. Una arteria principal y su vena comunicante se
dividen mas o menos en pequeñas arteria paralelas y en venas de
paredes delgadas, cada una se entrelaza libremente o con su patrón
regular. En la red caudal del manatí la arteria principal se divide
proximalmente, una división rompe dentro del recubrimiento vascular,
mientras los otros continúan distalmente inalterables, dentro del
recubrimiento.
El corazón es grande, globular y presenta
una hendidura
ventricular grande y cuenta con dos venas cavas superiores.14 En
promedio un corazón de manatí puede pesar 3.25 Kg +/- 0.87 g3
Vanoye (1999) encontró en una cría de manatí el corazón con 100 g
Las dos venas pulmonares se unen a la entrada del atrio izquierdo
por una sola abertura. La vena cava abdominal es doble y un pequeño
seno hepático está presente. No existe un esfínter de la vena cava no
diferenciado, pero se ha encontrado una delgada banda de músculo
diafragmático que pasa alrededor de la vena cava de la disposición
ventral del diafragma en la forma que recuerda un vestigio de una asa
20
muscular encontrada en los zalofhus y phocoena. Esta banda no parece
ser completamente efectiva en la oclusión del retorno venoso al
corazón; esta particularidad provoca la sospecha de porque los manatíes
no son capaces de bucear durante periodos prolongados. Esto parece
estar necesariamente asociado con una bradicardia durante el buceo.
El lecho venoso del manatí, como cualquier mamífero marino, se
caracteriza por un incremento de la capacidad debido al desarrollo de la
expansión (colectores) en regiones separadas de la red venosa y el
desarrollo del plexo venoso. La frecuencia cardiaca es de 50 a 60 latidos
por minuto, sin embargo, durante un buceo de ocho minutos disminuye
a 30 latidos por minuto. El bióxido de carbono sanguíneo aumenta sin
un incremento correspondiente del ácido láctico, esto sugiere que los
músculos permanecen aislados de la circulación durante el buceo.
El manatí tiene una capacidad limitada de termogénesis y su
mecanismo primario para llevar a cabo la termorregulación se basa en
los cambios en la circulación periférica. El papel que posiblemente
desempeña la grasa subcutánea en reducir la pérdida de la temperatura
periférica se encuentra en discusión.14
El sitio primario de hemopoyesis en algunos mamíferos marinos
parecer ser el cuerpo de las vértebras. Cetáceos y pinnípedos que son
muy aerodinámicos, poseen huesos largos ( húmeros, fémur, costillas)
que están reducidos en tamaño o incluso faltan. Los pinnípedos y
cetáceos tienen un delgado hueso cortical denso que infringe
lateralmente sobre el espacio potencial disponible de médula, causando
en consecuencia reducción en el tamaño de la cavidad medular.
Al perecer no existe actividad hemopoyética en huesos largos o
costillas de manatíes adultos. Aunque el espacio perivascular en huesos
largos de muchos otros mamíferos contienen médula, dichos espacios en
huesos de manatíes adultos contiene pérdida de tejido conectivo que es
desprovisto de la formación de elementos de sangre. En el húmero de
un feto de manatí, pocos sitios esparcidos de hemopoyesis fueron
encontrados, pero un número insignificante de células de sangre son
producidas ahí.
La presencia de huesos largos paquiostóticos amedulares en
manatíes ha permitido el desarrollo de un sitio primario de hemopoyesis
alterno. La eritropoyesis y granulopoyesis en Trichechus manatus ocurre
principalmente en los cuerpos vertebrales.
Una examinación profunda de una sección medial del cuerpo de
una vértebra revelo dos formas de hueso: una zona exterior de hueso
21
compacto, no poroso y una zona interior de hueso poroso consistente en
primordios de trabéculas que forman un sistema de laberinto para
intercomunicar espacios ocupados por la médula del hueso.
Microscópicamente , la región porosa del cuerpo de la vértebra
contiene células
de características morfológicas de eritroblastos,
megacariocitos y mielocitos. Esas células son los precursores de
eritrocitos, plaquetas y granulocitos respectivamente. El cuerpo de la
vértebra también contiene numerosos eritrocitos.
Los eritroblastos poseen núcleo y una pequeña cantidad de
citoplasma. Los eritrocitos fueron anucleados, con citoplasma eosinófilo.
Megacariocitos poseen múltiples núcleos y considerable citoplasma.
Estas características megacariocíticas, unidas con su tamaño largo,
hacen esas células fácil de distinguir de otras células. Los mielocitos
contienen gránulos citoplasmáticos. Los gránulos eosinófilos son
especialmente fácil de ver usando la tinción “Giemsa” modificada.4
5.6.6.1 Fórmula roja
En manatíes rescatados con traumas y/o condiciones de
enfermedades infecciosas, inicialmente hay un incremento de volumen
de paquete celular (PCV), hemoglobina, sodio y cloro que puede ser
presumiblemente como resultados de la deshidratación. En esta fase
inicial es en ocasiones acompañado por un periodo de rapidez o lentitud
en el consumo de alimento. Si sobreviven esos manatíes al problema
primario, los parámetros eritrociticos regresan dentro de los rangos
normales, siguiendo un inicio de alimentación propia o con la ayuda de
un tubo de alimentación con una solución rehidratadora y materia
vegetal.
Los manatíes desarrollan anemia, reflejada en los índices bajos de
eritrocitos incluyendo decremento en la cuenta de eritrocitos. La anemia
presumiblemente es una respuesta secundaria a una enfermedad poco
desarrollada. Cualquier anemia normocitica, normocrómica regenerativa
o no regenerativa puede verse con una inflamación crónica, como una
neumonía
supurativa.
Una
anemia
macrocitica,
hipocromica,
regenerativa ha sido vista en un manatí que perdió gran volumen de
sangre siguiendo una herida traumática. Esta particular anemia fue
acompañada posteriormente por signos periferales de eritrogenesis
incluyendo anisocitosis, poiquilocitosis y policromalasia.8 Figura 11.
22
Campo a 40X
Campo a 70x
Figura 11 Glóbulo rojo de manatí.
5.6.6.2 Fórmula blanca
Los manatíes parecen tener una respuesta menor en los términos
de leucocitos totales como los animales domésticos (excepto con los
bovinos) basados en comparaciones de índices clínicos de leucocitos
antemorten y en descubrimientos a la necropsia de individuos de
manatí. En los manatíes una marcada leucocitosis puede ser reportada
si una cuenta de leucocitos es de 25 000 células por mm3 o más alta.
La leucocitosis en los manatíes puede ser relativa (un incremento
en el porcentaje del tipo celular), absoluta (un incremento en el numero
total de células) o ambas. Un incremento en número de leucocitos
polimorfonucleares (PMNs) mas a menudo cuentan para la leucocitosis y
es generalmente asociada con daño tisular. Con daño tisular las cuentas
diferenciales de leucocitos muestran limfopenias y/o eosinopenias. Esta
figura hematológica ha sido vista en manatíes con condiciones aparentes
relación – estrés, sin asociación de daño tisular.
23
Los PMNs de los Manatíes, elefantes, e hyrax son células
heterofilicas, no netrofilicas como en otros mamíferos marinos o
terrestres. Figura 12. Cuando esas células son vistas por primera vez
por un técnico de laboratorio, ellos erróneamente reportan una
eosinofilia; Por lo que es crítico que el laboratorio escogido para análisis
hemáticos de manatí sea conocedor de la hematología de mamíferos
marinos.8
Campo a 70X
Campo a 100X
Campo a 100X
Figura 12 Glóbulos blancos de manatí
5.6.6.3 Química sanguínea
En los manatíes la aminotransferasa aspartato (AST) es de poca
utilidad diagnóstica, presuntamente debido a su larga distribución de
tejido en todo su cuerpo. Sin embargo, los niveles de AST pueden ser
significativamente elevados en manatíes con daño masivo traumático
multitísular.
Los manatíes siendo herbívoros no rumiantes, son similares a las
ovejas y las vacas cuyos hígados no contienen niveles significativos de
ALT (alanina aminotransferasa). Sin embargo, hepatitis necrotizante o
hepatopatias en manatíes no están todavía reportadas en la literatura,
24
ni se tiene visto en necropsias por Bossart o White. Son necesarias
futuras investigaciones de ALT de los mamíferos marinos.
En las vacas, la bilirrubina no es un indicador sensible de
enfermedades hepáticas. En las vacas con severa enfermedad hepática,
los niveles séricos de bilirrubina son solo elevaciones leves.
Los
manatíes pueden ser similares porque las elevaciones de bilirrubina
total, bilirrubina directa y bilirrubina indirecta pueden no estar
documentadas. Sin embargo, enfermedad hepática o hemolítica
tampoco están todavía reportadas en manatí.
Tanto en manatíes como en nutrias marinas la creatinina quinaza
(CK) tiene un rango amplio, presuntamente indicativo de excesivo daño
muscular, los animales pueden incurrir con forcejeos en procedimientos
de sangrado y/o captura.
Los valores de nitrógeno ureico de sangre (BUN) reportados para
manatíes, relativo a otros mamíferos marinos parecen bajos,
posiblemente reflejado en la dieta natural herbívora del manatí. Así,
BUN puede no ser un buen indicativo de función renal en los manatíes.
Por lo que necesitan ser establecidas futuras referencias de rangos para
manatíes.
La interpretación de la concentración de creatinina en carnívoros y
mamíferos marinos herbívoros es similar a la de los mamíferos
terrestres y podría ser una prueba diagnóstica de elección para
enfermedad renal.
El ácido úrico en mamíferos marinos como en mamíferos
terrestres, es inestable y tiene día a día variaciones estaciónales en el
mismo individuo, un manatí varado diagnósticado con azotemia
prerenal, tuvo elevación de creatinina, bajo BUN y niveles elevados de
ácido úrico (>5.0 mg/dl). El incremento de nivel de ácido úrico podría
ser debido a fracaso renal y/o inanición.
En el ganado y carnero normal, la fosfatasa alcalina (AP) se
presenta activamente como un amplio rango de valores, eso no es útil
como un indicador de ictericia obstructiva o insuficiencia del hígado.
Porque obvia patología de hígado no ha sido vista en manatíes, el
significado de AP diagnósticando enfermedades hepáticas en estas
especies es desconocido. Los valores de fosfatasa alcalina se tienen
incrementados por administración de esteroides a dos manatíes en
shock.
25
La deshidrogenasa láctica es elevada en manatíes con heridas
traumáticas por colisiones de botes o compuertas indicando daño celular
multiorgánico no específico.
Los valores de glucosa en manatí tiene un amplio rango y es
altamente variable con cada individuo, presuntamente debido al grado
de rapidez y/o esfuerzo en el tiempo de la toma de sangre.
Los altos niveles de Amilasa o Lipasa en mamíferos marinos vistos
por Bossart han sido en recién nacidos o manatíes juveniles. Sin
embargo, esos niveles elevados no pueden todavía ser correlacionados a
enfermedad pancreática en los manatíes, porque la pancreatitis aguda o
crónica no ha sido observado en esta especie. Los niveles de Amilasa no
fueron incrementados en un solo manatí con azotemia prerrenal.
Durante los intentos de rehabilitación y rescate de manatí en el
Miami Seaquarium, el shock y la deshidratación han contribuido al
incremento de proteína total en suero, existe Hipoalbuminemia en el
sufrimiento de manatíes por mal nutrición e inanición. Una media a
moderada Hipergammaglobulemia ha sido notada en manatíes con
infecciones crónicas.8
5.6.7 Sistema urogenital
La estructura del riñón carece de la forma multilobulada presente
en los pinnípedos y cetáceos, siendo incapaz de filtrar grandes
cantidades de agua.
Los testículos son intrabdominales y tienen vesículas seminales
grandes. La próstata no es glandular pero está constituida de tejido
muscular eréctil.
Los ovarios son masas grandes de aspectos de racimos de uva,
sin una cubierta capsular gruesa. Los oviductos son cortos y están
fusionados distalmente.
El útero es bicornual y se hace angosto
distalmente alrededor del cervix.
La placenta hemocorioalantoidea de un feto de 43 cm es zonal y
estrictamente delimitada, sin embargo, es posible que sea difusa en
estado temprano. No se ha observado saco vitelino. El alantoides es
grande, llenando el saco coriónico excepto por una pequeña área donde
el amnios se fusiona con el corión.14
26
5.6.8 Sistema endocrino
Es relevante mencionar que la tiroides histológicamente parece
estar inactiva o en estado de reserva. Los sirenios son los únicos
mamíferos marinos que se alimenta de vegetación acuática, algunas de
las cuales contienen importantes cantidades de yodo. Los huesos
pesados de los sirénidos podrían haber sido resultado secundario a un
hipotiroidismo inerte que se desarrolla en una etapa temprana a una
adaptación imperfecta a la vida marina.
La tiroides es bilobulada y no tiene istmo, la corteza del timo es
prominente. Las glándulas adrenales son alargadas.14
5.6.9 Sistema nervioso y órganos de los sentidos
El peso del cerebro en los adultos es de 300 a 380 gramos. Los
hemisferios están divididos por una
profunda y amplia fisura
longitudinal. La disposición anterior del lóbulo frontal es casi vertical y
el nervio olfativo está bien desarrollado; el nervio olfativo y el bulbo se
encuentran a la mitad de esta parte baja. El lóbulo occipital es cóncavo
ventralmente. El cuerpo calloso es grueso y corto. El tálamo es largo.
El trigémino es el mas largo de los nervios craneales.
Los ojos son pequeños y están ubicados en los costados de la
cabeza. Como una adaptación al medio acuático, sus ojos están
cubiertos por una delgada membrana nictitante o tercer párpado, la
cual es una capa transparente que les ayuda a mejorar la visión, y que
bajo el agua es relativamente buena, pues son capaces de distinguir
objetos a una distancia de hasta 10 metros. La membrana nictitante se
encuentra en la cara medial del ojo. Un cartílago está relacionado a
este. No tienen glándula lagrimal, ni conducto nasolagrimal. Figura 13.
El ojo es muy pequeño comparado con el tamaño de la cavidad
orbitaría, esta tiene un depósito de grasa reticular notable alrededor y
debajo de la grasa y es envoltura de los nervios infraorbitarios que
inervan al labio superior y sus anexos. La esclerótica es densa y gruesa
en la parte posterior del ojo. La pupila se observa como un óvalo
transverso, pero en realidad es redonda. Su ojo presenta “tapetum
lucidum” que refleja el color rosa en la oscuridad.
27
Figura 13 Ojo de manatí.
Los orificios del oído son apenas perceptibles y se encuentran
situados detrás de los ojos. El hueso del tímpano es como un aro
incompleto y engrosado, el meato acústico externo es pequeño tiene
aproximadamente 4 mm de diámetro, y carece de pabellón externo.
No usan la ecolocación o sonar para orientarse o identificar
objetos, como lo hacen los otros mamíferos marinos, pero pueden
distinguirlos en aguas turbias.
Sus sonidos consisten de dos o más frecuencias y son emitidos en
condiciones de temor, juego, protesta, conflicto interno, excitación
sexual del macho y por irritación.
Las cerdas duras que cubren la nariz parecen tener una función
táctil-sensitiva. La lengua tiene glándulas mucosas y papilas que quizá
sirven como órganos del tacto.14
5.7 ETOLOGÍA
Los manatíes son animales inofensivos que gustan de estar solos,
en pares o en pequeños grupos de 3 a 6 individuos, pero forman
grandes agregaciones durante las corrientes frías de las aguas
tropicales; sus interacciones sociales son temporales y más bien breves.
No son animales territoriales pero si tienen cierta preferencia por
algunas áreas para descansar, comer o reproducirse.14
28
Existen
tres
comportamiento:
grupos
de
clasificación
con
relación
al
1.- crías – cualquier joven asociado con una hembra
2.- juvenil – son independientes pero sexualmente inmaduros
3.- adultos – toman parte en la reproducción.12,14
Carecen de una organización social permanente, con excepción de
la relación que se establece entre la madre y su cría durante el periodo
de dependencia del pequeño. Forman agrupaciones temporales durante
las actividades de apareamiento, en los sitios donde se concentra el
alimento y durante el invierno en las aguas cálidas.
Cada manatí puede tener un rango independiente, sin embargo,
mucho de estos establece jerarquía sobre otros.
Toda su vida permanecen en el agua, ocasionalmente permanecen
fuera del agua durante periodos cortos.
Un grupo de manatíes es muy calmado durante la madrugada y
muestran un poco más de sus hocicos fuera del agua; tan pronto el sol
calienta el agua los manatíes exponen más sus cuerpos y permanecen
mayor tiempo en la superficie.
Los manatíes descansan por periodos de dos a doce horas
diariamente, comúnmente en sesiones de dos a cuatro horas y durante
las corrientes frías descansan durante la mayor parte del día.
Su comportamiento nocturno es similar al realizado durante el día.
La respiración es a través de las narinas, al parecer los manatíes
son incapaces de respirar por la boca. Únicamente la punta de la nariz
es expuesta durante periodos de descanso.
Ellos salen y se hunden fácilmente y si la agregación es densa,
seguido golpean sobre otro que está encima.
Los machos son más activos socialmente, es decir, inician las
interacciones.
29
Los adultos yacen cerca y suben para respirar juntos, algunas
veces ponen en contacto sus hocicos, primero bajo del agua, después
sobre el agua, como si se besaran, el cual es probablemente un gesto de
saludo o identificación. El lapso de tiempo que permanecen bajo el agua
ha sido calculado en 7 – 16 minutos.
En los jóvenes en desarrollo el largo tiempo de buceo seguido
excede los 8 minutos y la mayoría de los zambullidos son de menos de
5 minutos. Esto es, sin embargo, tiempo suficiente para que un animal
se hunda, sumerja y se mueva mas profundo dentro del agua por 30 o
más metros antes de subir a la superficie para volver a respirar.
Los manatíes normalmente bucean
aire y no se ha observado que exhalen
buceando.
con los pulmones llenos de
bajo el agua conforme van
Ellos pueden usar sus aletas pectorales para remar por sí solos
lentamente hacia la derecha o izquierda y cuando nadan contra la
corriente pueden usarlas en golpes antero posteriores alternados.
No pueden vivir en aguas con temperaturas menores de 20°C y
prefieren vivir en aguas poco profundas y cercanas a las orillas. Por eso
es más fácil observarlos en las bahías que en el mar abierto. También
tienen preferencia por las aguas de baja salinidad como son las de los
ríos, estuarios y algunos cenotes conectados al mar, o a las de bahías,
como sería en el caso de la bahía de Chetumal, el Río Hondo y varios
cenotes en el estado de Quintana Roo.
Algunos animales en cautiverio han sido vistos caminando en agua
poco profunda sobre las puntas de sus aletas hacia adentro pero casi
todos parecen estar convencidos de que los manatíes adultos son
bastante incapaces de moverse cuando están completamente
encallados. Cuando están totalmente fuera del agua son incapaces de
respirar propiamente debido al peso de sus cuerpos y tratan de
voltearse sobre su espalda.14
5.8 NUTRICIÓN Y HÁBITOS ALIMENTICIOS
Sus hábitos son completamente herbívoros. Los manatíes son muy
flexibles en sus requerimientos alimenticios. Consumen gran variedad
de plantas flotantes, sumergidas o pegadas al fondo, como pastos
marinos, algas y lirios.
30
Para agarrar o arrancar las plantas, utilizan sus extremidades
anteriores y sus fuertes y flexibles labios, los cuales están cubiertos de
cerdas duras que ayudan a sujetar el alimento.
El labio superior es evertido dentro de la fuente alimenticia,
después los cojinetes laterales son cerrados hacia adentro, jalando así
la vegetación dentro de la hendidura de la boca.
Como característica especial,
continuamente a lo largo de su vida.
sus
muelas
se
reemplazan
Las actividades de alimentación bajo el agua dejan rastros bien
definidos, que ayudan a corroborar el tipo de alimento consumido y
hacer cálculos de la cantidad de alimento que ingieren.
Estos rastros o señales de alimentación se ven claramente en las
aguas claras de los cenotes y costas de caribe donde la profundidad es
escasa. De la misma manera, se constata su presencia y hábitos
alimenticios en las zonas lacustres y ribereñas donde el agua es turbia,
solo cuando las plantas consumidas eran pastos que emergían en las
márgenes dejando un rastro muy parecido al que dejaría una vaca al
forrajear.
De las especies de plantas acuáticas y semiacuáticas comúnmente
encontradas en los ambientes dulceacuícolas, sean arroyos, lagunas y
ríos, que son alimentos del manatí, la mayor diversidad esta
representada por los pastos Gramineae.
Los manatíes pasan casi todo su tiempo donde el suministro de
alimento es mayor, de ahí que consuman, si las hay, principalmente las
hidrófitas sumergidas que forman praderas extensas.14 Ver tabla #1.
31
Tabla #1. Plantas acuáticas comúnmente consumidas por los
manatíes.12
Pastos sumergidos
Halodule wrightii
Estuarios y áreas marinas
Syringodium filiforme
Thalassia testidinum
Ruppia maritima
Halophyla spp
Najas marinas
Cladium jamaiscense
Plantas sumergidas
Hydrilla verticillata
Áreas de agua dulce
Vallisneria americana
Najas guadalupensis
Ceratophyllum demersum
Panicum purpurascens
Myriophyllum exalbescens
Potamogeton pectinatus
Potamogeton foliosus
Cabomba palaeformis
Macroalgas
Ulva sp
Bentos-estuario y áreas marinas
Gracilaria sp
Caulerpa prolifera
Plantas flotantes
Eichornia crassipes
Agua dulce
Pontederia lanceolata
Pista stratiotes
Salvinia spp
Nynphaea ampla
Plantas vasculares emergentes
Spartina alterniflora
estuarios
Aunque los manatíes son principalmente herbívoros, ellos también
son detritívoros y coprófagos. Además, consumen incidentalmente junto
con los pastos marinos o macrofitas de agua dulce, una gran variedad
de invertebrados, al igual que ingieren gran cantidad de algas asociadas
a estas plantas y muy raramente macroalgas que son de vida libre como
el Sargassum.
La cantidad de alimento requerido para los manatíes bajo
condiciones naturales no se conoce, pero se han hecho cálculos con
base en los requerimientos de animales en cautiverio.
La dieta en cautiverio consiste de lechuga, col, alfalfa y plantas
acuáticas. Consumen de 7 a 15 Kg de alimento diario/animal. Sin
embargo, también se menciona que el consumo de alimento
diario/animal en cautiverio es de 30 a 50 Kg.14
32
En cautiverio los manatíes comen una impresionante variedad de
alimentos, como son plantas vasculares acuáticas, pastos, dientes de
león, legumbres, frutas y pan (Hartman, 1971). La lechuga tiene
grandes componentes en la dieta del manatí en cautiverio. Puede ser
suficiente para mantenerlos por un largo tiempo, la dieta de lechuga no
es probablemente la adecuada para soportar la reproducción, lactancia y
el crecimiento de animales jóvenes, por lo tanto se les debe adicionar
proteínas, vitaminas y minerales (Hartman, 1971).
Rara vez los manatíes en cautiverio comen pescado, por ejemplo
en Jamaica se les da de 10 a 11 Kg. Por día, también se les ofrece
comida para caballo, 4.5 Kg al día. Los manatíes en cautiverio
usualmente aceptan la comida de buena gana y fácilmente se acoplan a
esta (Robert L., Brownel, Jr., et al. 1978).
Un ejemplo de una ración diaria para un manatí de 300 Kg en el
Miami Seaquarium es mostrado en la tabla #2, las vitaminas son
siempre dadas en la mañana, frecuentemente seguidas por plátanos,
zanahorias y alimento comercial (Monkey Chow). Esta comida de
pequeño tamaño es ideal como recompensa en las sesiones de
entrenamiento. Las vitaminas o medicamentos orales son ofrecidos
dentro de los plátanos.
El requerimiento de agua dulce es desconocido. Animales en
ambientes marinos se ha observado que requieren de una fuente de
agua dulce para beber.8
Tabla #2 Ración diaria para manatíes en el Miami Seaquarium.8
Producto
Cantidad Ofrecido por la
Minerales y multivitaminas
Suplemento de calcio y fósforo
Plátanos
Zanahorias
Cubos de alfalfa
“Monkey chow”
Col
Lechuga (iceberg/romana)
Hojas de lechuga y puntas de apio
Una o dos
Una o dos
0.1 Kg
1.0 Kg
0.5 – 1.0 Kg
1.0 Kg
7.5 Kg
8.2 Kg
4.5 Kg
Mañana
Mañana
Mañana
Mañana
Mañana
Mañana
Tarde
Tarde
Tarde
5.9 REPRODUCCIÓN
Se sabe muy poco acerca de la reproducción de los sirenios.
33
No se sabe si son poliestros estacionales o tienen un estro
prolongado.
En esta especie es difícil diferenciar a simple vista a las hembras
de los machos, ya que no hay variación en el tamaño, color ni forma del
cuerpo, sin embargo, se menciona que aunque el dimorfismo sexual en
el tamaño no esta documentado, las hembras se ven mas abultadas.
Para conocer su sexo es necesario observar la posición de los genitales
en la parte ventral; las hembras presentan su apertura genital en el
ultimo tercio del cuerpo, muy cerca del ano, a diferencia del macho, en
el que está ubicada a la mitad del cuerpo. Figura 3.
Existe hasta la fecha controversia de la edad a la que alcanzan su
madurez sexual, ya que no se sabe a ciencia cierta a que edad pueden
empezar a reproducirse los manatíes, pero las observaciones en el
campo sugieren que la madurez sexual se alcanza entre los 6 y los 10
años de edad, pero también se menciona que esta se alcanza de los 4 a
los 6 años, teniendo una longitud de 2.5 a 2.7 m.
En cautiverio se reporto que dos hembras alcanzaron su madurez
sexual a los 9 años de edad. Se sugiere que la reproducción ocurre cada
año, que no existe una época reproductiva establecida, por lo general,
una hembra da a luz una sola cría al año. Son raros los partos
gemelares, así como la adopción de una cría por otra hembra.
El periodo de gestación va de 385 a 400 días. Por lo general
siempre nacen de cola, aunque también se reporta que nacen de
cabeza.14 Durante el parto las hembras aparecen aisladas.9 Figura 14.
Al nacer la cría mide 1 metro 10 cm y pesa en promedio 30 Kg
momentos después de nacer el pequeño manatí es capaz de nadar junto
a su madre, la cría se vale para moverse únicamente con sus aletas,
posteriormente aprende a nadar con la cola. Permanecerá al lado de su
madre por casi dos años, hasta el momento de ser destetado y alcanza
su tamaño adulto después de los cuatro años.
Las hembras pueden tener una cría cada dos a cinco años, sin
embargo, cuando pierden a su cría es posible que su ciclo estral se
acorte, presentando el siguiente en menor tiempo, teniendo otra cría en
2 años.
El hecho de tener un intervalo entre parto de 5 años, el cual es
muy amplio, influye considerablemente para que la especie tenga
34
graves problemas al tratar de recuperarse de la mortalidad causada por
las actividades del hombre.
Figura 14 Momento del parto de manatí. Tomado de Dierauf, L. A. 1990.
Parece que los machos son sexualmente activos alrededor del año
de edad. Las hembras raramente parecen ser receptivas aún estando
aparentemente en estro y pueden estar rodeadas de un grupo de
machos que han sido atraídos por ella. Las hembras son atractivas para
los machos durante el proestro, estro y metaestro, sin embargo, la
hembra únicamente es receptiva durante el estro, el cual tiene un
periodo de duración muy corto. Durante este periodo la hembra se
aparea con muchos machos.
Varios machos pueden perseguir a una hembra durante el estro,
sin formar ningún nexo permanente.
La actividad precopulatoria es intensa. Los machos acechan a la
hembra que esta presumiblemente en estro, sin embargo, ella no esta
receptiva y trata de apartar su área genital de los machos. Este tiempo
prolongado que manifiestan en dicha actividad, quizás tiene algún
propósito fisiológico. Las hembras pueden tener muchos periodos
estériles de estro antes de que se realice una concepción exitosa. Estos
periodos son similares en los elefantes. Se observo que una hembra fue
receptiva para copular y permitió la penetración por 3 machos durante
un intervalo de 45 minutos. Durante el apareamiento ambos animales
permanecen en posición horizontal en el agua, en una profundidad
suficiente que permita soportarlos, el apareamiento se lleva a cabo en
una posición ventroventral respectivamente. 14
35
Las aletas pectorales de los machos son más largas en proporción
a lo largo del cuerpo y tienen en la superficie ventral una área de
velcron, en ambas para sujetar a las hembras durante la cópula.9
5.10 ENFERMEDADES Y SU CONTROL
La información concerniente a las enfermedades de los manatíes,
corrientemente compilada de información sobre animales salvajes y de
un pequeño numero de animales mantenidos en cautiverio. Como un
resultado de su estatus de peligro, son esfuerzos primariamente
utilizados a recuperarlos de lesiones o enfermedad de los animales,
rehabilitación y su liberación. En adición el departamento de protección
ambiental en Florida, recupera todos los manatíes muertos encontrados
y realizan las necropsias completas. Los factores de mortalidad están
divididos dentro de diferentes categorías, la cual incluye trauma por
lancha, enmallamiento, traumas por compuertas y represas, muerte
perinatal y otras causas naturales.
Perinatales: la malformación congénita de las aletas, consistentes
de variaciones de ectodagtilia, ha sido reportada en tres casos. Un
manatí tuvo una fisura simétrica bilateral en la mano. Otros dos casos
de ectodagtilia han sido observados en Sea World. Dos casos de hernia
umbilical también fueron observados en neonatos, esto fue por fibrosis
madura de los segmentos intestinales y cubiertos de rollos de peritoneo
sin notable contaminación.
Muchos huérfanos son eventualmente encontrados cuando ellos
están moribundos. Síntomas comunes asociados con los huérfanos son
grados variantes de emaciación visual, cansancio metabólico,
hipoglicemia, hipotermia, constipación, ingestión de cuerpos extraños,
enterocolitis y septicemia. Los huérfanos y recién nacidos también
serían examinados por signos de onfalitis y peritonitis secundaria.
Organismos aislados de infecciones umbilicales incluyen: Streptococus
faecium, Pleisomonas shigelloides, Pseudomonas putrifaciens y putida,
Escherichia coli, Morganella morganii, Acinetobacter calcoaciticus y
Bacteroides ureolyticus.
Las técnicas de cuidados críticos incluyen: una fuente de agua
limpia para decrecer el compromiso bacterial, la temperatura del agua
aumentada a 29.4°C, cuentas completas de sangre, perfil químico de
suero, radiografías y cultivos fecales. La dieta de soporte usualmente
tiene que ser basada en productos comerciales con grados de variación
de éxito. Un análisis denso inicial de la leche de manatí no provee una
36
adecuada penetración dentro de los requerimientos en los diferentes
ácidos grasos y amino ácidos; la leche de manatí contiene altos niveles
de taurina y metionina, así como de cadenas cortas y medianas de
ácidos grasos. El uso de antibióticos es poco útil, para el control de
septicemias, aunque la enterocolitis puede ser el mayor factor de
mortandad. El uso de antibióticos orales, para evitar la inyección,
frecuentemente contribuye a complicaciones intestinales. Clínicamente,
los casos de enterocolitis han sido asociados con infecciones de
Pseudomonas aeruginosa, especies de Salmonella, Clostridium difficile y
Citrobacter freundii. Un número de casos de enterocolitis puede ser
relacionado a infecciones nosocomiales.
El calostro de manatí y las inmunoglobulinas del suero han sido
usado para la suplementación en recién nacidos.
Enfermedades en juveniles: las razones más comunes de
presentación aparentes en manatíes juveniles a incluir son: separación
prematura de la madre, mientras depende de los cuidados de la madre y
en individuos jóvenes recién destetados inhabilitación para manejar la
hipotermia durante el primer invierno. Muchos manatíes jóvenes pueden
estar en un estado obvio de pérdida de peso o emaciación, el perfil
químico de suero a menudo muestra signos de deshidratación,
incluyendo elevación en los niveles de creatinina. Dermatitis bacterial
severa puede ocurrir en animales juveniles que están comprometidos
por agua fría crónica y emaciación. Esta condición ha sido confundida
con una posible etiología de quemaduras químicas porque las lesiones
de la piel son extensas. Las lesiones pueden estar como postulas que
erupcionan y ulceran en porciones largas de la cara, extremidades,
torso y cola. Los organismos aislados de abscesos han incluido:
Staphilococus aureus, M. morganii, Aeromona hidrophila, especies de
Vibrio, especies de Clostridium, especies de Pseudomonas, Edwardsiella
tarda y especies de Yokonella. Lesiones en piel y laceraciones pueden
abordar múltiples organismos, incluyendo aquellos ya listados, otros
anaerobios como especies de Fusobacterium y especies Bacterioides y
hongos como especies de Mucor.
El tratamiento incluye desinfección tópica con una solución al 5%
de Betadyne M.R., antibiótico parenteral, y una buena calidad de agua.
Cambios en la salinidad solo pueden influenciar en los componentes
bacterianos de la piel. Soporte nutricional de alimentación por tubo
puede ser necesario para incrementar los requerimientos calóricos,
asociados con daño excesivo en las condiciones de perdida de calor del
cuerpo. La constipación es también común y el estrés por frío puede
requerir aceite mineral y enemas.
37
Manifestaciones en adultos: los problemas de enfermedad natural
en los adultos pueden también incluir las complicaciones por periodos
extensos de agua fría durante los meses de invierno. Los efectos en el
metabolismo de los adultos aparecen al contacto con el frío mas que en
los juveniles, pero los adultos muestran signos de incomodidad debajo
de los 20°C con temblores, decremento en la actividad y baños de sol a
la superficie. Como con otros grupos de edad, la enterocolitis puede ser
un factor de mortalidad. Los manatíes solitarios pueden enfermar por
etiologías primarias desconocidas pero tienen numerosos factores como
la deshidratación. En adición, esos animales pueden constiparse e
inapetentes, síntomas de constipación incluyen falta de defecación y la
presencia de material fecal firme encontrado en examinación rectal o
radiografías. El agua es lo primero que se da por tubo gástrico para
tratar la deshidratación, entonces se administra oralmente aceite
mineral así como enemas de agua templada. El volumen de agua por
enemas puede exceder los 6 litros por animal adulto, si es necesario. Si
los enemas son requeridos por periodos largos, la sal normal puede ser
usada para decrecer el potencial del edema intestinal.
Otros procesos de enfermedades han sido reportados en manatíes,
incluyen intususcepción, dermatitis, complicaciones intestinales, pleuritis
y abscesos en pulmón.
Los manatíes son algo susceptibles a intoxicaciones en la sangre
por dinoflagelados marinos, los cuales producen toxinas que afectan a
peces, aves y otros mamíferos.9
El dinoflagelado de la sangre reportado en la Florida, es producido
por Gymnodinium breve y esta localmente referido como “Marea Roja”,
los severos componentes tóxicos liposolubles son producidos y tienen un
efecto primariamente neuromuscular.18 Clínicamente algunos animales
todavía vivos muestran síntomas neurológicos, incluidos desorientación,
incoordinación, hiperflexión y respiración forzada.9
Se han reportado dos presentaciones de tuberculosis: Una cutánea
por Mycobacterium chelonia que se caracteriza por erosiones circulares
superficiales con ulceraciones punteadas localizadas centralmente. La
infección secundaria presente en los nódulos linfáticos regionales y en
los pulmonares, se da después de un largo curso crónico y una
presentación pulmonar, donde se ha aislado Mycobacterium chelonia con
lesiones en pulmón caracterizadas por ser grandes, blandas y con
abscesos de pared delgada o tubérculos que contienen exudados
arenoso14 y Mycobacterium marinum en animales con Pneumonia
piogranulomatosa.8
38
Micosis epidermal, causada por Epidermophytos floccosum, fue
reportada en manatíes en cautiverio, la condición fue manifestada en el
rostro, cara, aletas y cola.14
Clínicamente, el numero de parásitos esta asociado con algunas
manifestaciones. C. cochleotrema organismo que ha sido visto en alto
numero en la nasofaringe y perece estar asociado a rinitis crónica y
síntomas de pneumonia. Otros nematodos, probablemente N. undicola,
fue asociada con enterocolitis edematosa severa. Los manatíes no se
han visto rutinariamente parasitados a menos que halla complicaciones
o concernientes con respecto a lenta respuesta a la terapia o
complicaciones intestinales crónicas como la diarrea o constipación.
Toxoplasma gondii fue reportado en asociación con encefalitis en un
manatí. Dos especies de Eimeria (E. Nodulosa y E. manatus) fueron
detectadas en el tracto intestinal. Parásitos de piel tienen incluidos
Copepoda (Harpacticus pulex) y Cirripedia (Chelonibia manatii).
Individuos de manatíes con dermatitis crónica solo puede albergar
nematodos saprofiticos en la piel.
Beck y Forrester enlistaron seis especies de parásitos helmintos
en 215 manatíes de la Florida, esos incluían un nematodo, un cestodo y
cuatro especies de trematodos.5 Ver anexo #1. 5
Las investigaciones dentro de los patógenos virales han sido
relativamente nuevas. Duignan y asociados analizaron suero para
evidencia de mobilivirus en manatíes y encontraron resultados positivos
en 5 manatíes aunque ninguno a mostrado signos de una infección
activa. Otros investigadores están revisando evidencias para serología
de mas de 20 patógenos virales y bacterianos, esos resultados no están
disponibles todavía.9
Los fármacos de uso en sirenios se muestran en el anexo #2.
5.11 CONTENCIÓN Y MANEJO
La restricción física es el medio más común en el manejo de
manatíes para examinación física y procedimientos clínicos. Una cría
neonata puede cargarse y restringirse por un individuo sin bajar el nivel
de agua de la alberca. El animal puede ser alcanzado desde la superficie
del dorso y sujetado del área pectoral. Los manejadores deben ser
cuidadosos para no obstruir la respiración y asegurarse que el rostro
quede sobre la superficie del agua. Los animales son tolerantes a este
tipo de manejo y no hay evidencia clínica de efectos adversos. Crías
39
huérfanas han aprendido a nadar hacia los brazos del manejador para
alimentación de bote. Las crías pueden levantarse desde el agua, sin
drenar el tanque y colocado en un colchón de espuma para colección de
datos de crecimientos, examinación física, administración de
tratamientos y procesos clínicos relacionados. Figura 15.
Restricción de manatíes juveniles grandes o adultos es de mayor
cuidado requiriendo de tres a cinco individuos para un control exitoso
del animal. El principal riesgo para el personal que maneja manatíes
grandes es el ser golpeados por sobre brincos del animal. Los manatíes
son extremadamente poderosos y podrán aventar al manejador de un
lado a otro en un giro violento cuando forcejea. La aleta no se puede
balancear lateralmente como en los cetáceos pequeños, pero el
movimiento total del cuerpo puede fácilmente ser detenido por una
persona sobre él.
Figura 15 Manejo de una cría.
La restricción de manatíes grandes para inyección o
procedimientos simples pueden ser generalmente acompañados por el
descenso completo del nivel del agua y manejar el animal de una
manera segura. Al mismo tiempo que el nivel baja el manatí comienza a
“vararse” él se colocara sobre su dorso. Esto representa una tensión por
el animal para disminuir la presión en su tórax y abdomen y puede
facilitar su esfuerzo respiratorio. Se debe tener cuidado para no dejar el
rostro sumergido cuando el animal sé de vuelta. Cuando la alberca se
rellene mientras el agua sube de nivel el animal regresara a su postura
original.
Una camilla o algún equipo especial no son necesarios para tomar
muestras de sangre o medidas del cuerpo, sin embargo, el acceso a la
superficie ventral para toma de orina o medición de temperatura
corporal es más fácil y más seguro si el animal se coloca en una camilla.
40
Una camilla es obligatoria para cualquier procedimiento que requiera un
movimiento del animal. La camilla debe de tener un orificio ventral para
permitir el acceso al área urogenital. El pesado de un manatí grande
puede ser acompañado por una grúa mecánica con polea para alzarlo.8
La droga más común usada para sedación en el Sea World es
Hidroclorhidrato de Midazolam. A una dosis de 0.045 mg/Kg
intramuscular (IM), y puede calmar a un manatí excitado por
aproximadamente 60 a 90 min. Esta dosis ha sido usada en transporte
para calmar rebeldía en animales saludables. El movimiento y la
respiración son disminuidos y el animal puede apreciarse dormido. Él,
sin embargo, responde a los estímulos y tiene un reflejo palpebral obvio.
El Midazolam ha sido usado en conjunto con Hidroclorhidrato de
Meperidona con una dosis arriba de 1 mg/Kg para facilitar el
removimiento del radio dislocado en un manatí. Combinaciones de
Diazepam (0.066 mg/Kg) con Meperidona ha sido usada en el Miami
Seaquarium para remover hueso dislocado de lesión vertebral.
Sedaciones clínicas en un animal que sostiene su respiración debe de
poner suma atención a la frecuencia respiratoria y profundidad, color de
las membranas mucosas y la respuesta a los estímulos como dolor o
reflejos del ojo. Midalozam a altas dosis (0.08 mg/Kg) ha sido usada
para facilitar la intubación para anestesia general. El largo de tiempo
desde la aplicación es arriba de 25 min. La suplementación de oxigeno
debe estar al alcance.
Agentes reversibles son comúnmente usados para complementar
el procedimiento.
El Flumazinil administrado IM puede ser usado para revertir los
efectos del diazepam y midazolam si el animal muestra signos de
incorporación o requiere alimentación forzada antes de regresarlo al
agua. Si esto es necesario para revertir los efectos de la meperidona,
Hidroclorhidrato de naloxona puede ser administrado.
Solo el Isoflurano ha sido usado para anestesia general inhalada
con niveles mantenidos para otras especies. Los animales pueden ser
monitoreados por niveles de dióxido de carbono, en suma al oxímetro
de pulso y gases de sangre cuando se disponga.9
41
Se consideran las siguientes constantes fisiológicas para los
manatíes:
Parámetro
Valor
Temperatura corporal
Frecuencia cardiaca
Frecuencia respiratoria
35 ° C.
50 latidos/min.
1 respiración cada 3-5 min.
En momentos de peligro el manatí puede permanecer sumergido
por más de 25 minutos.14,A
Para realizar la toma de sangre el manatí debe ser manejado fuera
del agua y colocado en una cama de hule espuma, para evitar la rigidez
de las superficies de la mesa o el piso. Se debe tener agua dulce
disponible para estar frecuentemente mojando todo el cuerpo del
manatí, esta agua debe estar a temperatura ambiente, el lugar es
preferible que este sombreado, resguardado del viento y realizar la
maniobra de preferencia por la mañana.
Para el traslado del manatí del tanque a la mesa se emplean
camillas de vinil plastificada, con perforaciones en el fondo (para que
drene el agua) y con un extremo abierto para que sea más fácil meter y
sacar al organismo.27
Punción: Los sitios para la punción son en la cara ventral de la
aleta posterior (cola)8,26 y en el plexo braquial8,9 esto dependiendo de la
facilidad en el manejo del organismo. Figura 16.
Se utilizan jeringas de 5 o 10 ml y agujas para insulina (25 x 16
mm, 5/8), pero lo más recomendable es utilizar la técnica de tubos al
vacío “vacutainer” en este caso la aguja debe de ser 0.7 x 38 mm, 22 G
1 ½).27
La asepsia antes de la punción es fundamental, ya que la piel del
manatí es rugosa y el medio en que vive es acuático, por lo tanto se
necesita utilizar cepillo quirúrgico para frotar firmemente durante 2
minutos como mínimo para disminuir la contaminación.9
42
Cara ventral aleta posterior
Plexo Braquial. Tomado de dierauf, L. A. 1990.
Figura 16 Sitios de punción para la toma de sangre.
Para el primer caso el lugar idóneo para la toma de sangre es en
la cara ventral de la aleta caudal, sobre la línea media y a una distancia
de 18 a 20 cm del borde de la cola y dirigido cranealmente (en crías de
hasta un año de edad) para ello se recomienda que sean de 3 a 4
personas para sujetar al manatí (una sosteniendo la cabeza y el pecho,
otra persona el pedúnculo caudal y una mas sujetando la cola muy
firmemente), bajo los siguientes pasos:
1.- Asepsia de la zona determinada para la punción con un cepillo
quirúrgico y un antiséptico.
2.- Punción con aguja para “vacutainer” del # 22 G a una
distancia de 18 a 20 cm del borde distal de la cola sobre la línea media,
palpando los espacios intervertebrales y a una profundidad de 1.5 a 2
cm. Dirigiendo la aguja en forma vertical.
3.- Introducir un tubo al vacío en la camisa del “vacutainer”, si no
se empieza a llenar el tubo será necesario buscar el vaso sanguíneo
sacando y metiendo la aguja lentamente sin que esta salga de la piel.
4.- Una vez que se lleno el tubo retirarlo de la camisa y colocar el
siguiente tubo. Tomar de 3 a 5 ml por muestra.
5.- Utilizar tubos al vacío con anticoagulante (para el hemograma,
velocidad de sedimentación, etc.) o sin anticoagulante (para la química
sanguínea, electroforesis, etc.). La sangre que sea depositada en tubos
con anticoagulante debe de mezclarse perfectamente para evitar dicho
efecto.
43
6.- Retirar la aguja y con una gasa estéril se hace presión en la
punción por espacio de 1 a 2 min. Adicionalmente se puede aplicar
nuevamente un antiséptico. Figura 17.
En el segundo caso para la punción es en la cara ventral de
cualquier aleta anterior, primero se deberá palpar el espacio inter óseo
entre el radio y el cúbito y en forma vertical introducir la aguja para
hacer la punción (plexo braquial) utilizando igualmente el método de
“vacutainer”. Pasos del 2 al 6.
Localización de punción en la cola.
Punción en la cola con “vacutainer”.
Asepsia de la zona.
Obtención de la muestra.
44
Punción con aguja en la cola.
Localización del área en aleta pectoral.
Obtención de sangre.
Asepsia del área.
Obtención de la muestra con jeringa.
Figura 17 Proceso progresivo para obtener la muestra de sangre.
Al finalizar la toma de sangre el organismo será devuelto a su
tanque. Se recomienda evitar hacer mucho ruido (gritar o golpear),
durante el manejo ya que con esto disminuye el estrés al manatí y así
se tendrán valores más exactos.
También se podrán utilizar las jeringas y agujas mencionadas
anteriormente para toma de muestras de sangre. La cual debe ser
vertida a los tubos para su transporte.
45
Se transportan las muestras en un medio frío para llevarlas al
laboratorio (hielera con una cama de hielos de 5 cm), no exponerlas a la
luz directa del sol y llevarlas lo más pronto posible, evitando los
movimientos bruscos. 27,28,30
5.12 CAUTIVERIO
Los requerimientos para alojar sirenios están definidos en la
Animal Welfare Act y son similares a los estándares establecidos para
cetáceos pequeños. Las regulaciones especifican requerimientos de
espacio en términos de la Dimensión Mínima Horizontal (DMH),
Profundidad (P), Área Superficial (AS) y Volumen (V) de la alberca.
La DMH recomendada para sirenios esta basada en el cálculo de
dos veces el promedio del largo del cuerpo del adulto (PLA).
El largo del cuerpo esta especificado como la distancia desde el
extremo del hocico al punto más distal de la línea media de la aleta
caudal del manatí y desde el extremo del hocico hasta la muesca en la
mitad de la aleta caudal del dugon.
La profundidad mínima de una alberca para mantener sirenios esta
especificada como un medio del promedio del largo del cuerpo del adulto
o 1.52 m, cualquiera que sea mayor.
Los requerimientos de volumen para alojar sirenios esta calculado
usando la fórmula desarrollada para los requerimientos mínimos en
cetáceos. Un medio del cuadrado de la DMH es multiplicado por π y el
resultado es multiplicado por la profundidad mínima aceptable para
determinar el requerimiento mínimo de volumen.
El cálculo para AS mínima requerida para albercas para mantener
sirenios esta basada en una sumatoria del promedio del largo del adulto
de cualquier animal en la alberca dividiendo el total de la suma entre
dos, elevando al cuadrado el numero resultado y multiplicado por π, este
resultado es multiplicado por el factor de 1.5.6,8,14 En la tabla # 3 se
observan las fórmulas de requerimientos y un cálculo efectuado como
ejemplo con un animal de 3 metros de largo total del cuerpo.
46
Tabla #3 Requerimientos para alojar manatíes en cautiverio.
Factor
Fórmula
Cálculo en un animal de 3 m.
DMH
2 X (PLA)
6.0 m
P
1.5 m o 0.5 (PLA)
1.5 m
V
(PLA)2 X 3.14 X P
42.3 m3
AS
(PLA/2) 2 X 3.14 X 1.5
10.5 m2
5.12 ACUARIO DE VERACRUZ
El Acuario de Veracruz, A.C. se localiza en el Playón de Hornos, de
Veracruz, Ver.; es una obra realizada por el Gobierno del Estado de
Veracruz. Su construcción se inicio en 1990 y fue abierto al publico 2
años mas tardes. Tiene una superficie total de 3,493 m² Figura 18 .
Figura # 18 Acuario de Veracruz, A.C. Vista aérea
De forma general esta formado por el Área pública y el Área
técnica, la primera esta compuesto por ocho áreas recreativas que son:
vestíbulo, senda ecológica, galería de agua dulce, pecera oceánica,
galería de agua salada, museo, video acuario y tienda.
47
En el área técnica esta compuesta por galería uno, galería dos
(pecera oceánica), galería tres, laboratorio de alimento vivo, laboratorio
químico, departamento de mamíferos acuáticos, aves y reptiles,
cocineta, bodega, área de filtración de agua dulce, área de filtración de
agua salada, cuarto de técnicos y la dirección técnica.
La calidad del agua es un asunto primordial en la operación del
acuario, de ella depende tanto la salud de los peces como la apariencia
de las peceras.
El sistema de agua dulce esta integrado por 9 peceras y 9
cuarentenas, 3 filtros de pretratamiento de agua, 3 filtros biológicomecánicos, 3 cisternas y cerca de 8 bombas de diferente caballaje.
Todos en conjunto tienen un volumen de 562 177 litros de agua, el
tiempo de recambio en cada pecera es de 2 horas 20 minutos. En esta
galería se exhiben aproximadamente 40 especies de animales
incluyendo a los mamíferos, las aves y los reptiles, todos ellos
representativos de ríos, lagos y lagunas de México, Asia, África y del
Amazonas.
El ciclo comienza tomando el agua del suministro de la Comisión
Regional de Agua y Saneamiento (C. R. A. S.) para almacenarse en una
cisterna, con la ayuda de una bomba es pasada por los filtros de
pretratamiento (arena, carbón, resina), posteriormente ingresa al
sistema cerrado de agua dulce siendo depositada en la cisterna de
aireación (inicio del ciclo), decantación y la de bombeo, con ayuda de 4
bombas es mandada el agua al tanque elevado, localizado en la azotea,
para que por gravedad se reparta a todas las peceras y cuarentenas, de
las anteriores nuevamente sale por gravedad y se dirige por un canal
recolector a los filtros biológico-mecánicos y finalmente el agua ya
filtrada se deposita en la cisterna de aireación.
Para obtener agua de mar más limpia se tendieron dos tuberías
submarinas de cuatro y ocho pulgadas de diámetro y 300 m de longitud,
que parten de un “pozo indio”, el cual tiene una profundidad de 7 m.
Con ayuda de una bomba se pasa el agua del pozo por un filtro de
arena para depositarla en una cisterna donde se le agrega cloro para
eliminar bacterias, esto se mantiene por 24 horas.
Al sacar el agua de la cisterna de cloración, por medio de una
bomba se hace pasar por un filtro rápido de arena e inmediatamente por
un sistema de rayos ultravioleta. Es hasta entonces que el agua ingresa
al sistema del acuario iniciando en la cisterna de aireación, y
48
posteriormente cuatro cisternas de sedimentación, están diseñadas de
tal manera que las partículas de suspensión queden en el fondo,
posteriormente pasan a la cisterna de bombeo.
El cuarto de bombeo es el corazón del acuario, aquí se encuentran
tres bombas de 30 Hp cada una, de las cuales solo dos funcionan
mientras que la otra esta de reserva. El agua es entonces dirigida al
tanque elevado, y de aquí baja por gravedad y se distribuye el agua a la
pecera oceánica y a la galería tres.
De la pecera oceánica sale el agua por la superficie por gravedad y
llega a los filtros biológico-mecánicos en planta alta y también sale el
agua por el fondo de la pecera para ser recibida en los filtros planta
baja; de la galería tres en agua sale de las peceras pasa por un canal
colector y se deposita en dos filtros también de la planta baja. El
objetivo de los filtros biológicos es degradar la materia orgánica y
desechos fecales de los animales mediante la degradación a través de
bacterias que se encuentran en la arena silica de los mismos, ellas se
encargan de desdobla el amonio, nitritos y nitratos principalmente, que
en grandes concentraciones puede ser toxico para los peces. Otra
función que desempeñan es la mecánica por retener partículas grandes
de alimento que pueden irse por los canales de desagüe.
Finalmente el agua sale de los filtros y se dirige a la cisterna de
aireación, en donde comienza nuevamente el ciclo. El volumen total de
agua de mar es de 2 800 000 litros, aproximadamente esta agua circula
con un gasto de 14 000 litros por minuto y tiene un tiempo de recambio
de 2 horas 25 minutos.2
49
VI.- MATERIAL Y MÉTODOS
El presente trabajo se realizó en las instalaciones del Acuario de
Veracruz, donde se mantienen las crías de manatí desde su llegada el 6
de Marzo de 1998, nombradas como “Silvia” y “Pablo”, median y
pesaban 1.07 m con 23 Kg y 1.05 m con 22 Kg respectivamente.
Ambas fueron capturadas incidentalmente con una red de cerco
por un pescador en la laguna de Alvarado, cerca de la comunidad de
“Arbolillo”, municipio de Alvarado en el Estado de Veracruz, figura 19,
con localización geográfica de 18º 48’ latitud Norte y 95º 51’ longitud
Oeste, el 1º de marzo de 1998.28 Después de la captura la Secretaría
del Medio Ambiente, Recursos Naturales y Pesca (SEMARNAP) y la
Procuraduría Federal de Protección al Ambiente (PROFEPA) decidieron
dejarlos en un pequeño corral de tela mosquitero en la misma laguna
para ver si la madre o el grupo de manatíes estaba cerca y poderlos
liberar. Al cabo de una semana y al no ver rastros de manatíes se
decidió trasladarlos a las instalaciones del Acuario de Veracruz A.C. para
su rehabilitación.
Figura # 19 Vista de la Laguna de Alvarado, Ver. Foto Palma S. J. 2000.
A la llegada de las crías fue invitado el Dr. Gregory Bossart del
Miami Seaquarium, especialista en manatíes, el cual determinó que las
crías tenían aproximadamente un mes y medio de edad, se sometieron
a un examen físico (piel, ojos, mucosa, sexo, medidas morfológicas) y
clínico (tomas de muestras de sangre, heces, secreciones) para
determinar el estado de salud por parte del Dr. Bossart.
50
6.1 ALOJAMIENTO
Las crías se trasportaron por vía terrestre y durante la noche
desde Arbolillo a Veracruz (40 min), en una tina circular con 30cm de
agua de la laguna. Durante el estudio ellos habitaron una cuarentena en
forma circular de 6 m de diámetro y una profundidad variable de 0.75 m
(marzo 1998) a 2 m (noviembre 1998) de agua dulce, ésta era filtrada
cada día, con dos filtros cerrados de grava; además, se realizaban dos
recambios parciales de agua diariamente, mediante la adición y el
monitoreo del Hipoclorito de calcio, se mantenía la concentración
promedio de cloro entre 1.0 y 1.5 mg/lt27 dado que este valor es el
requerido para mantener el agua libre de organismos patógenos,
principalmente bacterias coliformes que pueden causar problemas de
salud a los ejemplares (com. per. Gregory Bossart) durante el primer
mes.28 La cuarentena se cubría con una lona plastificada en forma de
cono durante la época de vientos fuertes, para evitar descenso de
temperatura del agua ya que no se contaba con un equipo para
mantener una temperatura constante.28 Figura 20
Figura 20 Cuarentena del Acuario
Fueron trasladados a la pecera numero ocho de la galería uno,
figura 21, a finales de noviembre de 1998 para su exhibición, esta
pecera tiene una capacidad de 30,000 lt es de forma trapezoidal con una
profundidad de 2.5 m. tiene dos ventanas en material acrílico con un
espesor de 5 cm. La decoración que presenta la pecera es artificial y de
apariencia rocosa las cuales cubren tres paredes. Figura 21
51
Se hicieron algunas adecuaciones para proporcionar un mejor
sistema de filtrado, por lo que se coloco un filtro de lecho profundo para
recibir el agua del fondo de la pecera con ayuda de una bomba de 5 Hp
proporcionando 12 recambios diariamente (sistema cerrado de
filtración), además se colocó una línea directa del sistema de agua
salada para la reposición de agua cuando se realizaban recambios a la
pecera, se prefirió mantenerlos en agua salada ya que el acuario cuenta
con un volumen mucho mayor de la misma, se realizo también una
modificación en el reboso de la pecera y esto fue para que pasara el
agua al canal colector del drenaje y dirigirse a la fosa de absorción, por
lo que en ocasiones trabajaba como un sistema abierto. Desde luego
que el cambio de agua dulce a agua salada fue paulatinamente,
incrementando la salinidad de 0 a 10 g/lt posteriormente a 20 g/lt y
finalmente a 30 g/l. Con un lapso de una semana entre cada aumento.
La iluminación es artificial por medio de dos lámparas de 400
watts cada una para 200 voltios, además una entrada de luz natural en
el techo con un domo de acrílico, lo cual permite la entrada directa del
sol al centro de la pecera.28
Figura 21 Pecera # 8 del Acuario. Plano isométrico de Pérez M., M. 1998.
La pecera al tener una entrada de agua salada adicionada y una
de agua dulce propio del sistema, nos permitió mantener a los
organismos en periodos de 3 meses en agua dulce, salobre y salada;
52
durante el invierno, pues el agua salada baja de temperatura y el agua
dulce sé mantenía más estable. Se le anexo una manguera de plástico
de ¾ de pulgada para proporcionarles agua dulce para beber. La
limpieza se realizaba diariamente por medio de un sifón, los acrílicos se
limpian una o dos veces por semana y se desinfecta toda la pecera cada
tres meses.
La temperatura máxima del agua registrada fue de 29º C y la
mínima de 23º C, con un promedio de 26º C;
6.2 PLAN DE TRABAJO
A su llegada se estableció un programa de mantenimiento en
cautiverio el cual incluía un protocolo de alimentación, un protocolo de
manejo y el protocolo de salud, teniendo en este último un calendario
para la toma de muestras para laboratorio (sangre, heces, orina, piel,
etc.), así como, la exploración medica completa (percusión,
auscultación, constantes fisiológicas, etc.). todos esos datos fueron
reportados en la bitácora diaria y en formatos para su evaluación. Ver
anexos #3, #4 y #5.
El calendario se basa con algunas modificaciones del “protocolo de
atención a bebes manatíes, de la red caribeña de atención
de
varamientos”, proporcionado por el Dr. Antonio Mignucci de Puerto Rico,
de acuerdo a la adaptación que las crías fueron presentando al
cautiverio.
6.3 PROTOCOLO DE ALIMENTACIÓN
Al tratarse de unas crías la alimentación adecuada fue la leche por
lo que se suministro una fórmula láctea basada en leche de soya,
sustituto de leche para perros, suero glucosado, un complemento
vitamínico (Clusivol, M.R.), vitamina C, E y calcio, estos últimos solo
ofrecidos en la toma de las 9:00 hrs.(anexo #6), tres semanas después
se les adiciono aceite de canola para incrementar los lípidos, al mes de
su llegada se elimino el sustituto de leche para perro por una leche
especial para mamíferos libre de lactosa y con un alto porcentaje de
lípidos, “Multimilk” M.R. (recomendada por el Dr. Bossart) siendo esto
paulatinamente, del mismo modo fue eliminándose el aceite de canola,
esta nueva leche se siguió ofreciendo junto con la leche de soya (anexo
#7), la cual también fue retirada poco a poco de la fórmula por producir
53
abundante fermentación, pues las crías despedían muchos gases y su
excremento se hacia grumoso (anexo #8).
Durante tres meses se utilizó suero oral junto con la leche
(Pedialyte SR-90, M.R.) por la deshidratación que presentaron las crías.
Se tomaron medidas higiénicas para el uso de todos los equipos y
utensilios para el manejo de las crías, si algún técnico que tuviera que
ver en el cuidado de estos se enfermaba de gripe o tos era relevado por
otro para evitar un posible contagio, también se evitaron visitas para no
estresarlos, así como también tocarlos.
El rol de alimentación fue de cada tres horas las 24 hrs. del día
(00:00 hrs, 03:00 hrs, 06:00 hrs, 09:00 hrs, 12:00 hrs, 15:00 hrs,
18:00 hrs y 21:00 hrs), al principio solo se registraban consumos de
hasta 150 ml por animal / toma, a lo largo de su mantenimiento se les
fue ofreciendo una mayor cantidad de leche por toma hasta llegar a 1 lt;
lo que representaba un consumo de 8 litros/animal/día. Figura 22. Ellos
prefirieron la leche a una temperatura de 30°C a 35°C, y para ser
suministrada se utilizaron chupones para becerros adaptados a botellas
de vidrio (envases de refresco de 500 ml) con un orificio de 3 mm.28
Figura 22 Cría tomando leche con mamila
Inicialmente fue necesario que el alimentador entrara a la
cuarentena para sujetar a las crías y ofrecerle el alimento después, los
manatíes se acercaban al llamado y se les detenía con una mano la
parte inferior del morro (hocico) y ellos inmediatamente abrían la boca.
A partir de enero de 1999 se fue suspendiendo una toma cada
mes y medio, pero sin dejar de ofrecer el litro por toma, siendo así el
54
inicio del destete de las crías el cual finalizó en enero de 2000. ver
gráfica # 1
250
200
Litros/Mes
150
100
50
0
Mar- AbrMay- Jun98
98
98
98
PABLO
Jul98
Ago- SepOct- Nov98
98
98
98
SILVIA
Dic98
Ene- FebMar99
99
99
Meses del año
Abr99
May99
Jun99
Jul99
Ago99
Sep99
Oct99
Nov99
Dic99
Ene00
Gráfica #1 Consumo de leche durante la lactación de las crías.
A la semana de su llegada se empezaron a ofrecer hojas de
lechuga sueltas y desinfectadas a las crías, las cuales eran depositadas
sobre la superficie, al principio los animales solo ramoneaban las hojas
sin ser notablemente consumidas por ellas, ya que se apreciaba su
consumo se agregaban mas hojas y se inicio un control para el inicio del
ofrecimiento de los vegetales, pasando por pruebas de aceptación y
variación de vegetales y el registro de la cantidad de alimento
consumido después de cada toma de leche, llegando al punto de ofrecer
piezas enteras de lechuga larga y romana, acelga, espinaca, manzana y
zanahoria. Al final de este estudio los animales ya consumían además
alfalfa, berro, col, ejote, germinado de soya, jitomate, mango, papa y
pepino siendo un total de 15 especies en cuatro ofrecimientos al día y
en promedio siendo 24 kg, esto es aproximadamente 12 kg / animal /
día. Figura #23. Cada especie de vegetal tiene una manera diferente de
preparación antes de ser ofrecida, ya algunas se cortan o se eliminan los
extremos e incluso algunas hojas. Ver gráfica #2
55
Figura #23 Crías comiendo vegetales
600
500
Kilogramos
400
300
200
100
0
Mar- AbrMay- Jun98
98
98
98
Jul- AgoSep- OctNov- Dic98
98
98
98
98
98
Ene- FebMar99
99
99
Meses del año
Abr99
May99
Jun99
Jul99
Ago99
Sep99
Oct99
Nov99
Dic99
Ene00
Feb00
Mar00
Gráfica #2 Consumo de vegetales durante el estudio.
6.4 PROTOCOLO DE MANEJO
Durante los tres primeros meses fueron pesados diariamente
colocándolos dentro de una camilla de lona plastificada con
perforaciones para que se drenara el agua, ésta era colgada de una
báscula electrónica marca “OHAUS”; para el cuarto y quinto mes se
pesaron en días alternos; durante el sexto mes de cautiverio fueron
56
pesados cada tercer día; del séptimo mes al año cada siete días; luego
una vez por mes y después del año cada tres meses, figura #24, de
acuerdo al protocolo proporcionado por Mignucci, A. (com. pers.). Ver
anexo #3. Por falta de una báscula con capacidad suficiente para poder
registrar el peso de los animales, no se obtuvieron los datos del último
trimestre. El registro de peso para las crías se observa en la gráfica #3.
Figura #24 Pesado de manatí.
250
200
kilogramos
150
100
50
0
Mar98
Abr- May- Jun98
98
98
Jul98
Ago- Sep98
98
Oct98
Nov98
Dic98
Ene- Feb- Mar99
99
99
Abr- May- Jun99
99
99
Jul99
Ago- Sep99
99
Oct99
Nov99
Dic99
Ene- Feb- Mar00
00
00
mese del año
pablo
silvia
Gráfica #3 Peso de las crías durante el estudio.
57
Las medidas morfológicas fueron tomadas cada quince días
durante cinco meses después cada vez que eran pesadas las crías,
figura #25,
las mediciones fueron establecidas de acuerdo a los
formatos proporcionados por el M.C. Benjamín Morales del Colegio de la
Frontera del Sur (ECOSUR) (anexo #9). Ver gráfica #4
Figura #25 Registro morfométrico.
2.5
2
Metros
1.5
1
0.5
0
Mar98
Abr98
May98
Jun98
Jul98
Ago98
Sep98
Oct98
Nov98
Dic98
Ene99
Feb99
Mar99
Abr99
May99
Jun99
Jul99
Ago99
Sep99
Oct99
Nov99
Dic99
Ene00
Feb00
Mar00
Meses
PABLO
SILVIA
Gráfica #4 Registro de la talla (largo total del cuerpo).
58
6.5 PROTOCOLO DE SALUD
Se tomaron un total de 13 muestras de la hembra “Silvia” para
hemograma y química sanguínea y 15 muestras del macho “Pablo” para
hemograma y 14 para química sanguínea. Las cuales fueron procesadas
en un laboratorio de análisis clínicos para humanos.
El muestreo se inicio en el mes de Marzo una semana después de
la llegada de las crías y en este mes se obtuvieron 3 muestras, en el
mes de Abril se tomaron 4, una muestra en el mes de Mayo, Junio,
Julio, Agosto, teniendo un muestreo más hasta el mes de Noviembre
(tres meses después), y como se había establecido solo dos veces al año
a partir de año de cautiverio siendo en los meses de Marzo y Septiembre
de 1999 y Marzo de 2000 que abarca este estudio. Figura #26.
Los exámenes de rutina fueron el hemograma y la química
sanguínea; además, en ocasiones se realizaron algunos exámenes
especiales como velocidad de sedimentación, cloro, sodio y potasio
sérico, deshidrogenasa láctica, proteínas total y algunas otras.
Figura #26 Toma de sangre.
En la siguiente tabla se observan el número de toma, su fecha
correspondiente y el mes en cautiverio.
59
Tabla #4 Registro de muestras de sangre.
NÚMERO DE
MUESTRA
FECHA DE MUESTREO
1
14-Mar-98
2
19-Mar-98
3
26-Mar-98
4
3-Abr-98
5
9-Abr-98
6
16-Abr-98
7
30-Abr-98
8
18-May-98
9
18-Jun-98
10
20-Jul-98
11
22-Ago-98
12
21-Nov-98
13
6-Mar-99
14
6-Sep-99
15
9-Mar-00
MES EN
CAUTIVERIO
1°
1°
1°
2°
2°
2°
2°
3°
4°
5°
6°
9°
12°
18°
24°
Del plexo braquial fueron obtenidas las muestras número 2,
12,13,14 y 15 y en la aleta posterior las muestras restantes (1, 3, 4, 5,
6, 7, 8, 9, 10 y 11). Así mismo en las muestras número 1, 2, 3 y 12 se
utilizaron jeringas y agujas teniéndose incluso en ocasiones que
lubricarse con un anticoagulante (EDTA) para prevenir la coagulación ya
que esta se realizaba rápidamente. El resto de las tomas fueron
realizadas por el uso del “Vacutainer”.
En la muestra uno de la hembra Silvia la sangre se coaguló y no
se pudieron hacer los análisis de hemograma. Y en la toma 8 no se pudo
obtener la muestra.
Con el macho Pablo sólo en la toma 2 la cantidad de sangre
colectada no fue la suficiente para realizar los análisis de química
sanguínea por lo que solo se realizo el hemograma.
El laboratorio de análisis clínicos (Laboratorio Deschamps)siempre
nos reporta la presencia de Eosinófilos, por lo que este dato fue
considerado como Neutrófilos Segmentados, tal como lo cita la literatura
y lo comenta el Dr. Gregory Bossart. (com per. 1998). Así como, la
ausencia de Metamielocitos, Neutrófilos en Banda, Eosinófilos y
Basófilos.
60
VII.- RESULTADOS
El análisis de estadística descriptiva del procesador software Excel
Microsoft Windows 98 M.R. obtuvo los siguientes resultados:
Media,
Desviación Estándar,
Rango – una Desviación Estándar y
Rango + una Desviación Estándar
Siendo reportados para la hembra “SILVIA” los siguientes valores
en la tabla #5. Tomando la media +- una desviación estándar,
representara el valor normal para las constantes hematicas.
Tabla #5 Valores encontrados en el presente estudio para la cría
huérfana de manatí hembra de hasta dos años de edad en
cautiverio.
VALORES
MEDIA
DESV. EST.
RANGO - RANGO +
3
3.44
G. ROJOS, MILLONES/mm
2.84
0.60
2.24
13.32
HEMOGLOBINA g/dl
11.20
2.11
9.09
42.30
HEMATOCRITO, %
35.81
6.48
29.33
VOLUMEN GLOBULAR
132.48
MEDIO, Fl
127.12
5.36
121.76
32.45
CMHB, %
31.19
1.25
29.94
LEUCOCITOS, MILES/mm3
METAMIELOCITOS, %
EN BANDA, %
SEGMENTADOS, %
LINFOCITOS, %
MONOCITOS, %
EOSINOFILOS, %
BASOFILOS, %
PLAQUETAS, miles/mm3
6.91
0.00
0.00
52.62
43.31
4.08
0.00
0.00
487.85
2.05
0
0
13.62
15.16
3.35
0
0
231.85
4.86
0.00
0.00
39.00
28.15
0.73
0.00
0.00
256.00
8.97
0.00
0.00
66.24
58.48
7.43
0.00
0.00
719.70
GLUCOSA mg/dl
UREA mg/dl
CREATININA mg/dl
ÁCIDO URICO mg/dl
COLESTEROL mg/dl
54.77
11.62
1.31
1.22
338.38
18.27
6.94
0.35
0.33
129.68
36.5
4.68
0.96
0.89
208.70
73.04
18.56
1.66
1.56
468.07
61
Los valores encontrados para el macho “Pablo” se muestran en la
tabla #6. Tomando la media +- una desviación estándar, representara
el valor normal para las constantes hematicas.
Tabla #6 Valores encontrados en el presente estudio para la cría
huérfana de manatí macho de hasta dos años de edad en
cautiverio.
VALORES
MEDIA
DESV. EST. RANGO - RANGO +
3
4.41
G. ROJOS, MILLONES/mm
3.32
1.09
2.23
16.41
HEMOGLOBINA g/dl
12.65
3.75
8.90
51.18
HEMATOCRITO, %
39.61
11.56
28.05
VOLUMEN GLOBULAR
127.97
MEDIO, Fl
121.33
6.64
114.69
32.81
CMHB, %
31.91
0.89
31.02
LEUCOCITOS, MILES/mm3
METAMIELOCITOS, %
EN BANDA, %
SEGMENTADOS, %
LINFOCITOS, %
MONOCITOS, %
EOSINOFILOS, %
BASOFILOS, %
PLAQUETAS miles/mm3
10.69
0.00
0.00
53.20
40.20
6.60
0.00
0.00
336.27
3.28
0
0
13.77
16.35
3.22
0
0
130.94
7.41
0.00
0.00
39.43
23.85
3.38
0.00
0.00
205.33
13.97
0.00
0.00
66.97
56.56
9.82
0.00
0.00
467.21
GLUCOSA mg/dl
UREA mg/dl
CREATININA mg/dl
ÁCIDO URICO mg/dl
COLESTEROL mg/dl
49.64
9.79
1.35
1.42
401.36
17.64
5.97
0.43
0.37
166.78
32.00
3.82
0.92
1.05
234.58
67.28
15.76
1.79
1.80
568.14
A continuación se muestra el comportamiento gráfico de cada uno
de los valores determinados y reportados por el laboratorio.
62
Pablo
14/02/2000
14/01/2000
14/12/1999
14/11/1999
14/10/1999
14/09/1999
14/08/1999
14/07/1999
14/06/1999
14/05/1999
14/04/1999
14/03/1999
14/02/1999
14/01/1999
14/12/1998
14/11/1998
14/10/1998
14/09/1998
14/08/1998
14/07/1998
14/06/1998
14/05/1998
14/04/1998
14/03/1998
Millones/mm3
5.00
4.50
4.00
3.50
3.00
2.50
2.00
1.50
1.00
0.50
0.00
Fecha
Silvia
Gráfico #5 Comportamiento gráfico de los Glóbulos Rojos de Silvia y Pablo.
63
Pablo
14/02/2000
14/01/2000
14/12/1999
14/11/1999
14/10/1999
14/09/1999
14/08/1999
14/07/1999
14/06/1999
14/05/1999
14/04/1999
14/03/1999
14/02/1999
14/01/1999
14/12/1998
14/11/1998
14/10/1998
14/09/1998
14/08/1998
14/07/1998
14/06/1998
14/05/1998
14/04/1998
14/03/1998
g/dl
5.00
4.50
4.00
3.50
3.00
2.50
2.00
1.50
1.00
0.50
0.00
Fecha
Silvia
Gráfico #6 Comportamiento gráfico de la Hemoglobina de Silvia y Pablo.
64
Pablo
14/02/2000
14/01/2000
14/12/1999
14/11/1999
14/10/1999
14/09/1999
14/08/1999
14/07/1999
14/06/1999
14/05/1999
14/04/1999
14/03/1999
14/02/1999
14/01/1999
14/12/1998
14/11/1998
14/10/1998
14/09/1998
14/08/1998
14/07/1998
14/06/1998
14/05/1998
14/04/1998
14/03/1998
%
60.00
50.00
40.00
30.00
20.00
10.00
0.00
Fecha
Silvia
Gráfico #7 Comportamiento gráfico del Hematocrito de Silvia y Pablo.
65
14/03/1998
28/03/1998
11/04/1998
25/04/1998
09/05/1998
23/05/1998
06/06/1998
20/06/1998
04/07/1998
18/07/1998
01/08/1998
15/08/1998
29/08/1998
12/09/1998
26/09/1998
10/10/1998
24/10/1998
07/11/1998
21/11/1998
05/12/1998
19/12/1998
02/01/1999
16/01/1999
30/01/1999
13/02/1999
27/02/1999
13/03/1999
27/03/1999
10/04/1999
24/04/1999
08/05/1999
22/05/1999
05/06/1999
19/06/1999
03/07/1999
17/07/1999
31/07/1999
14/08/1999
28/08/1999
11/09/1999
25/09/1999
09/10/1999
23/10/1999
06/11/1999
20/11/1999
04/12/1999
18/12/1999
01/01/2000
15/01/2000
29/01/2000
12/02/2000
26/02/2000
Fl
140.00
135.00
130.00
125.00
120.00
115.00
110.00
105.00
100.00
Fecha
Pablo
Silvia
Gráfico #8 Comportamiento gráfico del Volumen Globular Medio de Silvia y Pablo.
66
Pablo
14/02/2000
14/01/2000
14/12/1999
14/11/1999
14/10/1999
14/09/1999
14/08/1999
14/07/1999
14/06/1999
14/05/1999
14/04/1999
14/03/1999
14/02/1999
14/01/1999
14/12/1998
14/11/1998
14/10/1998
14/09/1998
14/08/1998
14/07/1998
14/06/1998
14/05/1998
14/04/1998
14/03/1998
%
35.00
34.00
33.00
32.00
31.00
30.00
29.00
28.00
27.00
26.00
25.00
Fecha
Silvia
Gráfico #9 Comportamiento gráfico de la Concentración Media de Hemoglobina de Silvia y Pablo.
67
14/03/1998
28/03/1998
11/04/1998
25/04/1998
09/05/1998
23/05/1998
06/06/1998
20/06/1998
04/07/1998
18/07/1998
01/08/1998
15/08/1998
29/08/1998
12/09/1998
26/09/1998
10/10/1998
24/10/1998
07/11/1998
21/11/1998
05/12/1998
19/12/1998
02/01/1999
16/01/1999
30/01/1999
13/02/1999
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27/03/1999
10/04/1999
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05/06/1999
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11/09/1999
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09/10/1999
23/10/1999
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20/11/1999
04/12/1999
18/12/1999
01/01/2000
15/01/2000
29/01/2000
12/02/2000
26/02/2000
miles/mm3
20.00
18.00
16.00
14.00
12.00
10.00
8.00
6.00
4.00
2.00
0.00
Fecha
Pablo
Silvia
Gráfico #10 Comportamiento gráfico de los Glóbulos Blancos (Leucocitos) de Silvia y Pablo.
68
14/03/1998
28/03/1998
11/04/1998
25/04/1998
09/05/1998
23/05/1998
06/06/1998
20/06/1998
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18/07/1998
01/08/1998
15/08/1998
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12/09/1998
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10/10/1998
24/10/1998
07/11/1998
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02/01/1999
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13/03/1999
27/03/1999
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31/07/1999
14/08/1999
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11/09/1999
25/09/1999
09/10/1999
23/10/1999
06/11/1999
20/11/1999
04/12/1999
18/12/1999
01/01/2000
15/01/2000
29/01/2000
12/02/2000
26/02/2000
%
80.00
70.00
60.00
50.00
40.00
30.00
20.00
10.00
0.00
Fecha
Pablo
Silvia
Gráfico #11 Comportamiento gráfico de los Segmentados (Polimorfonucleares Neutrófilos) de
Silvia y Pablo.
69
Pablo
14/02/2000
14/01/2000
14/12/1999
14/11/1999
14/10/1999
14/09/1999
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14/05/1999
14/04/1999
14/03/1999
14/02/1999
14/01/1999
14/12/1998
14/11/1998
14/10/1998
14/09/1998
14/08/1998
14/07/1998
14/06/1998
14/05/1998
14/04/1998
14/03/1998
%
80.00
70.00
60.00
50.00
40.00
30.00
20.00
10.00
0.00
Fecha
Silvia
Gráfico #12 Comportamiento gráfico de los Linfocitos de Silvia y Pablo.
70
14/03/1998
28/03/1998
11/04/1998
25/04/1998
09/05/1998
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13/02/1999
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13/03/1999
27/03/1999
10/04/1999
24/04/1999
08/05/1999
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31/07/1999
14/08/1999
28/08/1999
11/09/1999
25/09/1999
09/10/1999
23/10/1999
06/11/1999
20/11/1999
04/12/1999
18/12/1999
01/01/2000
15/01/2000
29/01/2000
12/02/2000
26/02/2000
%
14.00
12.00
10.00
8.00
6.00
4.00
2.00
0.00
Fecha
Pablo
Silvia
Gráfico #13 Comportamiento gráfico de los Monocitos de Silvia y Pablo.
71
14/03/1998
28/03/1998
11/04/1998
25/04/1998
09/05/1998
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06/06/1998
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01/08/1998
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13/03/1999
27/03/1999
10/04/1999
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25/09/1999
09/10/1999
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04/12/1999
18/12/1999
01/01/2000
15/01/2000
29/01/2000
12/02/2000
26/02/2000
miles/mm3
900.00
800.00
700.00
600.00
500.00
400.00
300.00
200.00
100.00
0.00
Fecha
Pablo
Silvia
Gráfico #14 Comportamiento gráfico de las Plaquetas de Silvia y Pablo.
72
14/03/1998
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11/04/1998
25/04/1998
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01/01/2000
15/01/2000
29/01/2000
12/02/2000
26/02/2000
mg/dl
90.00
80.00
70.00
60.00
50.00
40.00
30.00
20.00
10.00
0.00
Fecha
Pablo
Silvia
Gráfico #15 Comportamiento gráfico de la Glucosa de Silvia y Pablo.
73
14/03/1998
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01/01/2000
15/01/2000
29/01/2000
12/02/2000
26/02/2000
mg/dl
30.00
25.00
20.00
15.00
10.00
5.00
0.00
Fecha
Pablo
Silvia
Gráfico #16 Comportamiento gráfico de la Urea de Silvia y Pablo.
74
14/03/1998
28/03/1998
11/04/1998
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25/09/1999
09/10/1999
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01/01/2000
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29/01/2000
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26/02/2000
mg/dl
2.50
2.00
1.50
1.00
0.50
0.00
Fecha
Pablo
Silvia
Gráfico #17 Comportamiento gráfico de la Creatinina de Silvia y Pablo.
75
14/03/1998
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01/01/2000
15/01/2000
29/01/2000
12/02/2000
26/02/2000
mg/dl
2.50
2.00
1.50
1.00
0.50
0.00
Fecha
Pablo
Silvia
Gráfico #18 Comportamiento gráfico del Ácido Úrico de Silvia y Pablo.
76
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20/11/1999
04/12/1999
18/12/1999
01/01/2000
15/01/2000
29/01/2000
12/02/2000
26/02/2000
mg/dl
700.00
600.00
500.00
400.00
300.00
200.00
100.00
0.00
Fecha
Pablo
Silvia
Gráfico #19 Comportamiento gráfico del Colesterol de Silvia y Pablo.
77
VIII.- DISCUSIÓN
9 Con la forma de destete de las crías paulatinamente se pudo
lograr que a una edad aproximada de un año y 9 meses,
estuvieran consumiendo únicamente 15 especies diferentes de
vegetales.
9 El peso de los manatíes fue aumentando paulatinamente en forma
progresiva hasta obtener una ganancia de peso de 156 Kg para la
hembra y 183 Kg para el macho (hasta el ultimo registro
obtenido); y en lo que se refiere a talla, la hembra creció 1.77 m y
el macho 1.84 m.
9 De las tomas de muestras de sangre, solo en una ocasión para la
hembra no se pudo tomar la muestra y tampoco se realizo el
examen completo en otra ocasión para ambos, pues la cantidad de
sangre no fue suficiente, sin embargo, dado el número de
exámenes éstos cubren todo el periodo descrito en el trabajo y no
presentan discrepancias visibles gráficamente.
9 Se observa en las gráficas (de la #5 a la #19) que existe una
situación anómala en los dos primeros meses de su estancia en el
Acuario de Veracruz, debido a la presentación de un cuadro de
deshidratación y estrés, posterior a ello, se observa claramente
que los glóbulos rojos, hemoglobina, hematocrito, volumen
globular medio, concentración media de hemoglobina y las
plaquetas permanecieron estables a lo largo del periodo; los
leucocitos, linfocitos, glucosa y creatinina tendieron a aumentar
ligeramente; los segmentados (PMNs) y monocitos tienden a
disminuir; solo la urea, ácido úrico y el colesterol mostraron un
aumento en los meses quinto y sexto de cautiverio y
posteriormente tienden a bajar.
9 Comparando con datos reportados por Roberto Sánchez25 (marzo
abril 2000) de una cría huérfana con complicaciones
gastrointestinales (enterocolitis) con los reportados en los tres
primeros muestreos son similares, pues también las crías se
encontraban con un cuadro de deshidratación y altos niveles de
leucocitos por el estrés de manejo y la adaptación al cautiverio.
78
IX.- CONCLUSIONES
9 El control que se tuvo sobre la calidad del agua (sistema de
filtrado, recambios, agua dulce, agua salada, temperatura, control
de coliformes), el ofrecimiento de la leche (buen porcentaje de
lípidos, rol de alimentación, vitaminas y minerales, fórmulas
ajustadas), el ofrecimiento de vegetales (desinfección, selección
de vegetales, pruebas de aceptación, registro de consumo), el
manejo (pesado, registro morfométrico, camillas, colchones) y la
supervisión medica así como el empeño realizado de manera
personalizada en cada uno de los organismos, reflejan el éxito
obtenido en el mantenimiento de las crías.
9 Para crías de hasta un año el área de punción para la toma de
sangre es en la cara ventral de la aleta posterior por el fácil
manejo del organismo y el tamaño relativamente grande de las
venas y arterias en comparación a las del plexo braquial en
animales de la misma edad. En animales de mayor edad en el
plexo braquial es el sitio de elección para la toma de muestra, ya
que se evita correr el riesgo de ser lastimados por un fuerte
coletazo del animal, así como, una posible lesión en él, si se
intenta hacer en la aleta caudal.
9 El uso del método de llenado automático en tubos cerrados al
vacío “Vacutainer” es el de elección para evitar la coagulación de
la sangre, así como, por la seguridad que se tiene y la facilidad
para el llenado de los tubos con o sin anticoagulante.
9 Los valores de la fórmula roja obtenidos durante los dos primeros
meses corresponden posiblemente a la patología citada en el
punto 5.6.6.1 sobre deshidratación, así también los resultados
obtenidos en la fórmula blanca y citado en el punto 5.6.6.2 sobre
el estrés.
9 Revisando el punto 5.6.6.3 sobre las posibles patologías
presentadas en la química sanguínea en manatíes y al ser datos
no concluyentes, los resultados obtenidos para ese estudio no
representa factores de patologías que pongan en peligro la vida de
los organismos.
9 Comparando los resultados del presente estudio con los
parámetros presentados por diferentes autores de organismos
adultos y de la subespecie Trichechus manatus latrirostris
encontramos que todos se encuentran dentro de los rangos
79
reportados, por lo cual se puede considerar que no existe una
diferencia marcada con los resultados, aun tratándose de crías.
9 Las constantes hematicas para crías de manatíes huérfanas
mantenidas en cautiverio desde el mes y medio de edad hasta los
dos años son los descritos en la tabla #5 y #6 y se pueden
considerar normales para condiciones de cautiverio en ese rango
de edad.
80
X.- BIBLIOGRAFÍA
1.- Acuario de Veracruz A. C., 1999. Manual de Fichas Informativas.
Departamento de Educación.
2.- Acuario de Veracruz, A. C., 1998. Manual de temas de Verano.
Departamento de Educación.
3.- Arriaga W., S.; Contreras S., W. 1993. El Manatí (Tricehchus
manatus) en Tabasco. Informe técnico, Universidad Juárez Autónoma de
Tabasco.
4.- Bazzini, M. D.; Reynolds III, J. E.; Essman, R. A.1986. Erythropoiesis
and Granulopoiesis in the West Indian Manatee, Trichechus manatus
(Mammalia: Sirenia). Acta anat. 126
5.- Beck, C; Forrester, D. J. 1988. Helminths of the Florida Manatee,
Trichechus manatus latirostris, with a discussion and summary of the
parasites of sirenians. Journal of Parasitology., Vol. 74 No. 4
6.- Colmenero R., L. Del C., 1984. Distribución, Situación y
Conservación de los manatíes en México. Instituto de Biología, Depto.
De Zoología, UNAM.
7.- Díaz G., H. R.
Guevara G., J. I., Friebenth M., J., 1995.
Determinación de constantes hemáticas en guanacos (Lama guanacoe).
Memorias del XII Congreso de la Asociación de Zoológicos, Criaderos y
Acuarios de la Republica Mexicana.
8.- Dierauf, L. A. 1990 CRC Handbook of Marine Mammal Medicine:
Health, Disease, and Rehabilitation. Chapter 1
9.- Fowler, M. E.; Miller, R. E. 1999. Zoo & Wild Medicine, Current
Theraphy 4, Chapter 72 p.p. 510 – 511.
10.- Gallegos M., J. 1995. Resultados preliminares de la Citometria
Hematica y Química Sanguínea en el Pecari de Labios Blancos (Tayassu
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Simposio sobre Fauna Silvestre. Colima, col. Mex.
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del manatí del caribe Tricehchus manatus en el Estado de Chiapas.
Instituto de Historia Natural, Tuxtla Gutiérrez, Chiapas. Zoológico Miguel
Álvarez Del Toro, Sección Veterinaria.
81
12.- Instituto Nacional de Ecología, Dirección General de Vida Silvestre,
2000. Proyecto de conservación, recuperación y manejo del manatí
(Trichechus manatus) en México.
13.- Medway, W.; Geraci, J. R., 1994. Clinical Pathology of Marine
Mammals en Memorias Diplomado en Medicina y Manejo de Fauna
Silvestre, UNAM.
14.- Montiel V., A., 1993. Manatí de las Antillas, del Caribe o
Tlacamichin (Trichechus manatus) Tesis de licenciatura UNAM, Fac. Med.
Vet. Y Zoot.
15.- Mignucci G., A. A., 1998. Protocolo de atención a bebes manatíes.
Red caribeña de atención a Varamientos. Caribbean Stranding Network.
Informe técnico.
16.- Ortiz Ch, S. D., Romero M, F. 2000. Propuesta de un programa
manejo del manatí (Tricehchus manatus manatus) en el Centro
Convivencia Infantil del Municipio de Jonuta, Tabasco. Tesis
Licenciatura, Facultad de Ciencias, Universidad Juárez Autónoma
Tabasco.
de
de
de
de
17.- O´Shea, T. J.; Rathbun, G. B., 1985. Tolerance of West Indian
Manatees to Capture and Handling. Biological Conservation, Chapter 33.
18.- O´Shea, T. J.; Rathbun, G. B., Bonde, R. K.; Buergelt, C. D.; Odell,
D. K. 1991. An epizootic of Florida Manatees associated with a
Dinoflagellate bloom. Marine Mammals Science. Vol 7, No. 2.
19.- Rangel R, I. C., García C, L. A. y Valladares de la C. J.C., 1994.
Probable efecto estacional sobre el hemograma del lobo gris mexicano
(Canis lupus baileyi) Memorias del XII Simposio sobre Fauna Silvestre
“Gral. M. V. Manuel Cabrera Valtierra”.
20.- Reynolds, J. E. III; Krause, W. J., 1982. A Note on the Duodenum
of the West Indian Manatees (Trichechus manatus), with Emphasis on
the Duodenal Glands. Acta anat. 114.
21.- Reynolds, J. E. III; Wilcox, J. R., 1985. Abundance of West Indian
Manatees (Trichechus manatus) around selected Florida power plants
following winter cold fronts, 1982- 1983. Bulletin of Marine Science. Vol.
36. No. 3
82
22.- Reynolds, J. E. III; Odell, D. K. 1991. Manatees and Dugongs. Facts
On File.
23.- Reynolds, J. E. III; Rommel, S. A. 1996. Structure and function of
the Gastrointestinal tract of the Florida Manatee, Trichechus manatus
latirostris
24.- Robin C, B., Ribeiro G. A., Yamakoshi M., Da Silva F. V. 1982
Artificial feeding unweaned Amazonian manatee. International Zoo
Yearbook, volumen 22.
25.- Sánchez O., R. Principales complicaciones gastroentéricas
presentadas en crías huérfanas de Manatí. 2000. Boletín Nosotros año 8,
número 2 Marzo-Abril, Asociación de Zoológicos, Criaderos y Acuarios de
la Republica Mexicana.
26.- Uchida, S. Reproduction and Health Care in Captivity, Research on
Sirenians and the role or Aquaria for it, Informe técnico, Okinawa Expo
Aquarium.
27.- Vanoye L., F. Fco. 1999. Proyecto de un manual para el
mantenimiento
de
cría
de
manatí (Trichechus manatus
manatus)
en cautiverio. Acuario de Veracruz, A. C. Trabajo no
publicado presentado ante el CONACYT.
28.- Vanoye L., F. Fco. 1999. Avances en el mantenimiento de las crías
de manatí (Trichechus manatus manatus)
a cargo del Acuario de
Veracruz, A. C. De marzo a diciembre de 1998. Memorias de la XXIV
Reunión Internacional para el estudio de los Mamíferos Marinos.
SOMEMMA. Mazatlán, Sin. Mex.
29.- Vanoye L., F. Fco.; Cisneros A. C.; Castelló V., G. 1999. Necropsia
de una cría de manatí (Trichechus manatus) que había sido capturada
incidentalmente en el Rió Limón, Municipio de Alvarado, Veracruz.
México. Cartel presentado en la XXIV Reunión Internacional para el
estudio de los Mamíferos Marinos. SOMEMMA. Mazatlán, Sin. Mex.
30.- Vanoye L., F. Fco. 2000. Avances en el mantenimiento de las crías
de manatí (Trichechus manatus manatus)
a cargo del Acuario de
Veracruz, A. C. De Enero 1999 a Enero 2000. Memorias de la XXV
Reunión Internacional para el estudio de los Mamíferos Marinos.
SOMEMMA. La Paz, B.C.S. Mex.
83
Referencias electrónicas
A.- www.civila.com/acuario/manati.html.
B.- www.somemma.org.mx/en_mexico.html
84
Anexo 1 Lista de parásitos en sirenios5.
Trichechus manatus latirostris
Familia
Género y especie
TREMATODA
Paramphistomidae
Chiorchis fabaceus
Opisthotrematidae Cochleotrema
cochleotrema
Moniligerum blairi
Nudacotylidae Nudacotyle undicola
NEMATODA
Ascaridae Heterocheilus tunicatus
CESTODA
Anoplocephalidae
PROTOZOA
Apicomplexa
CRUSTACEA
Copepoda
Cirripedia
Localización
Lumen del ciego y colon
Nares, pulmón
Encapsulado en paredes de
intestino delgado
Lumen de intestino delgado
Lumen y mucosa de estómago e
intestino delgado
Anoplocephala sp.
Lumen de intestino delgado
Toxoplasma gondii
Cerebro
Harpacticus pulex
Chelonibia manatí
Piel
Piel
Trichechus manatus manatus
Familia
Género y especie
TREMATODA
Paramphistomidae Chiorchis fabaceus
Opisthotrematidae Cochleotrema
cochleotrema
NEMATODA
Ascaridae Heterocheilus tunicatus
Localización
Lumen del ciego y colon
Nares, pulmón
Lumen y mucosa de estómago e
intestino delgado
Trichechus inunguis
Familia
Género y especie
TREMATODA
Paramphistomidae Chiorchis fabaceus
NEMATODA
Ascaridae Heterocheilus tunicatus
PROTOZOA
Apicomplexa Eimeria trichechi
Localización
Lumen del ciego y colon
Lumen y mucosa de estómago e
intestino delgado
Oocistos en heces
Trichechus senegalensis
Familia
Género y especie
TREMATODA
Paramphistomidae Chiorchis fabaceus
NEMATODA
Ascaridae Heterocheilus domningi
CRUSTACEA
Cirripedia Chelonibia manatí
Platylepas hexastylos
Localización
Lumen del ciego y colon
Desconocido
Piel
Piel
85
Dugong dugon
Familia
Género y especie
TREMATODA
Paramphistomidae Solenorchis baeri
Solenorchis gohari
Solenorchis
naguibmahfouzi
Solenorchis travassosi
Indosolenorchis
hirudinaceus
Zygocotyle sp.
Localización
Ciego
Ciego
Ciego
Ciego y proximal del colon
Ciego
Opisthotrematidae Opisthotrema dujonis
Tubos de Eustaquio, oído medio
y esófago
Opisthotrema australe
Tubos de Eustaquio y oído medio
Pulmonicola pulmonalis
Pulmón
Cochletrema indicum
Nares y pulmón
Lankatrema mannarense
Pared de estómago, duodeno e
intestino delgado
Lankatrema minutum
Pared de la glándula del cardias
Lankatrema microcotyle
Pared del íleon
Lankatrema macrocotyle
Pared del íleon
Lankatrematoides gardneri Ductos pancreáticos
Folitrema jecoris
Vesícula biliar
Labicolidae Labicola elongata
Abscesos
Rhabdiopoeidae Rhabdiopoeus taylori
Lumen de intestinos
Taprobanella bicaudata
Estómago, duodeno y píloro
cecal
Haerator caperatus
Lumen de íleon
Faredifex clavata
Abscesos grandes en paredes del
íleon
Spirorchiidae Huevos de especies
desconocidas
NEMATODA
Ascaridae Paradujardinia halicoris
Lumen de estómago y glándula
del cardias
CRUSTACEA
Cirripedia Platylepas hexastylos
Piel
86
Anexo 2 Lista de fármacos comúnmente utilizados en manatíes.8
DROGA
Ácido acetil salicílico
Amikacina
Amoxicilina
Ampicilina
Amprolio
Acido ascórbico
Atropina
Carbonato de calcio
Clorhidrato de calcio
DOSIS
10 mg/kg.
5mg/kg
22 mg/kg.
5.5 mg/kg
150 mg/kg.
1 mg/kg.
0.2 mg/kg.
2g
1 – 2 ml
Gluconato de calcio
30 – 60 ml
Carbencilina
Clortetraciclina
Cimetidina (Tagamet)
Dexametasona
Dextrosa (5% en
agua)
15 mg/kg.
20 mg/kg.
5-10 mg/kg.
2.2 mg/kg.
40-50 mg/kg./d
Dietilcarbamazina
3.3 mg/kg.
Dietilestrilbesterol
0.5-1.0 mg
Dihidroestreptomicina 10 mg/kg.
FRECUENCIA
2 veces al día
2 veces al día
2 veces al día
1 vez al día
1 vez al día
1 vez al día
1 vez al día
2 veces al día
2 veces al día
4 veces al día
1 vez al día
2 veces al día
Difenhidramina
Doxopram
Emetrol
Efedrina
Epinefrina (1:1000)
2-4 mg/kg.
10 mg/kg.
5-10 mg/kg.
5 mg
0.1 mg/kg.
2 veces al día
Eritromicina
Fenbendazol
Flumetasona
Ácido fólico
Furosamida
Gentamicina
Griseofulvina
Halotano
5.5 mg/kg.
11 mg/kg.
0.2 mg
5 mg
2 mg/kg.
4.4 mg/kg.
15 mg/kg.
5%
2%
200 u/kg
2 veces al día
1 vez al día
1 vez al día
1 vez al día
4 mg/kg.
2 u/kg
100 wg/kg
10 mg/kg.
7 mg/kg.
2 ml/kg
10 mg/kg.
2 veces al día
cada 2 horas
Heparina
Hidrocortisona
Insulina
Ivermectina
Kanamicina
Kaopectate
Ketaconazol
1 vez al día
1 vez al día
4 veces al día
4 veces al día
cada 6 horas
1 vez al día
RUTA
Intramuscular
Oral
Oral en plátano
Oral
Oral
Intramuscular
Oral
Intravenoso,
intracardiaca 10% sol.
Intravenoso 10%
solución lenta
Intravenoso
Oral
Oral
Intramuscular
Intravenoso
intraperitoneal y
subcutánea
Oral
Oral
Intramuscular ,
subcutánea
Oral
Intravenoso
Oral
Oral
Intravenoso,
intramuscular
Oral
Doble
Oral, intramuscular
Oral
Intramuscular
Intramuscular
0ral 45 d
Inducción
Mantenimiento
Intravenoso,
subcutánea
Oral
Intravenoso a efecto
Intramuscular
Oral
Intramuscular
Oral
Oral
87
DROGA
Lactato ringer´s
DOSIS
40-50 ml/kg/d
250 ml/d
FRECUENCIA
1 vez al día
Levamisol
Lidocaína
15 mg/kg.
2 mg/kg.
Lincomicina
Manitol
Mebendazol
Metamucil
Metronidazol
Aceite mineral
Naloxona
2.5 mg/kg.
1-2 g/kg
20 mg/kg.
5-10 g
50 mg/kg.
15-30 ml
0.4 mg
2 veces al día
4 veces al día
Neomicina
Niclosamida
Nistatina
Oxacilina
Oxitetraciclina
20 mg/kg.
160 mg/kg.
100 000 u
20 mg/kg.
15 mg/kg.
4.5 mg/kg.
20 mg/kg.
40 USP unidades
4 veces al día
Oxitocina
Penicilina procaína
Penicilina
estreptomicina
Penicilina (K)
40 000 u/kg
Fenilefrina
Piperacina
Polimixina B
Prazicuantel
Prednisolona
0.15 mg/kg.
110 mg/kg.
2 mg/kg.
10 mg/kg.
1 mg/kg.
Intravenoso bolos
repetir en 20 min
1 vez al día
4 veces al día
2 veces al día
2 veces al día
3 veces al día
25 000 IU/kg
1 00 IU/kg
3 mg/kg.
10 mg/kg.
20 mg
50 mg/kg.
2 ml/kg
RUTA
Intravenoso,
subcutánea,
intraperitoneal
Oral rehidratación de
bebes 15kg
Intravenoso
Oral
Oral
Oral 5 d
Oral
Intravenoso o
intramuscular
Oral
Oral
Oral
Intramuscular manati
Intramuscular dugon
Oral
Intravenoso o
intramuscular para
bajar leche
Subcutánea dugon
Intramuscular manatí
3 veces al día, 4 Oral
veces al día
Intravenoso
Oral
2 veces al día Intramuscular
Oral
2 veces al día Oral, intramuscular
alergia
2 veces al día Oral, intramuscular
inmunosupresión
Intravenoso shock
1 vez al día
Oral
2 veces al día Oral
4 veces al día Oral
Riboflavina
Bicarbonato de sodio
Subsalicilato de
bismuto
Sulfadiazina
200 mg/kg. Inicial
Sulfadimetozina
25 mg/kg.
1 vez al día
Sulfametazina
50 mg/kg.
2 veces al día
2 veces al día
Oral siguiendo dosis
100 mg/kg.
Oral, intravenoso,
intramuscular
Oral, intravenoso
88
DROGA
Testosterona
Tetraciclina
Tiamina
DOSIS
2 mg/kg.
20 mg/kg.
1 mg/kg.
Vitamina
Vitamina
Vitamina
Vitamina
2-4 mg/Kcal
alimento
25-35 mg/kg.
Pescado
400u/kg/d
200 wg/d
30 u/kg/d
100 IU7kg pescado
A
B12
D
E
FRECUENCIA
1 vez al día
1 vez al día
1 vez al día
1 vez al día
1 vez al día
1 vez al día
1 vez al día
Ruta
Oral arriba a 30 mg
Oral, intramuscular
Intramuscular seguir
por oral
Oral 2 h antes de
alimentación
Oral correo
alimentación
Oral por 10 d
Oral, intramuscular
Oral por 10 d
Oral
89
Anexo 3 Formato de consumo de leche
DEPARTAMENTO DE MAMÍFEROS ACUÁTICOS, AVES Y REPTILES
REGISTRO DE ALIMENTACION
MANATÍ SILVIA
FECHA
HORA
FORMULA
VOL.
VOL.
#
INICIAL
FINAL
CONSUMO
TIEMPO
min.
HECES
SI
NO
GASES
SI
OBSERVACIONES
NO
90
Anexo 4 Formato de consumo de vegetales.
DEPARTAMENTO DE MAMÍFEROS ACUÁTICOS, AVES Y REPTILES
REGISTRO DE CONSUMO DE VEGETALES
MANATIES
DIA
HORA
NOMBRE
CANTIDAD
PESO
PESO
CONSUMO
COMUN
PZAS
INICIAL
FINAL
Grs.
OBSERVACIONES
91
Anexo 5 Formato de medidas morfológicas.
DEPARTAMENTO DE MAMÍFEROS ACUÁTICOS, AVES Y REPTILES
REGISTRO DE DATOS MORFOMETRICOS
MANATIES
1
FECHA
D A T O S
M O R F O M É T R I C O S
EXTREMO DEL HOCICO AL EXTREMO DE LA ALETA CAUDAL
2
EXTREMO DEL HOCICO AL CENTRO DE LA ABERTURA ANAL
3
EXTREMO DEL HOCICO AL CENTRO DE LA ABERTURA GENITAL
4
EXTREMO DEL HOCICO AL CENTRO DEL OMBLIGO
5
EXTREMO DEL HOCICO AL ORIGEN ANTERIOR DE LA ALETA PECTORAL
6
EXTREMO DEL HOCICO AL CENTRO DEL OJO
7
EXTREMO DEL HOCICO AL CENTRO DEL MEATO AUDITIVO EXTERNO
8
CENTRO DEL OJO AL CENTRO DEL MEATO AUDITIVO EXTERNO
9
DISTANCIA OJO A OJO POR EL DORSO
10
CENTRO DEL OJO AL CENTRO DE LA ABERTURA NASAL
11
LONGITUD DE LA ALETA PECTORAL, DEL ORIGEN ANTERIOR AL EXTREMO DE
ESTA
LONGITUD
DE LA ALETA PECTORAL, DE LA AXILA AL EXTREMO DE ESTA
12
13
ANCHURA MÁXIMA DE LA ALETA PECTORAL
14
LONGITUD PERPENDICULAR DE LA TETA
15
BASE DE LA ALETA CAUDAL AL EXTREMO DE ESTA
16
ANCHURA MÁXIMA DE LA ALETA CAUDAL
17
DIÁMETRO DE LA BASE DE LA COLA
18
DIÁMETRO A LA ALTURA DEL ANO
19
DIÁMETRO A LA ALTURA DEL OMBLIGO
20
DIÁMETRO A LA ALTURA DE LA AXILA
21
PESO
SILVIA
PABLO
TIEMPO DE MANIOBRA
*TODAS LAS MEDIDAS SON EN CENTIMETROS Y EL PESO EN KILOGRAMOS.
92
Anexo 6 Formula láctea inicial.
INGREDIENTES
Sustituto de leche para perro
Leche de soya
Leche “MultiMIlk”
Pedialyte
Multivitaminas
Dextrosa 50%
Calcio
Vitamina C
Vitamina E
Aceite de canola
CANTIDAD
18 g.
42 g.
18 g.
375 ml.
3 ml.
20 ml.
500 mg.
500 mg.
200 mg. 2 veces al dia
0
VALOR CALÓRICO TOTAL
3 511. 2 Kcal.
CONTENIDO NUTRICIONAL
Proteínas
Hidratos de carbono
Lípidos
Vitamina A
Vitamina B1
Vitamina B2
Vitamina B6
Vitamina B12
Vitamina C
Niacina
Vitamina D2
Vitamina D3
Vitamina E
Colina
Biotina
Ac. Fólico
Calcio
Fósforo
POR TOMA g.
26.5
32.87
22.38
TOTAL g.
212
262.96
179.04
VITAMINAS Y MINERALES TOTALES
19 998 UI
Magnesio
384.60 mg.
Zinc
5.76 mg.
D-Pantenol
3.07 mg.
Sodio
19.2 mg.
Potasio
1 096 mg.
Cloro
31.68 mg.
Hierro
960 UI
Cobre
1 278 UI
Yodo
219.32 mg.
Selenio
463.98 mg.
Manganeso
0.031 mg.
Cloruro de Na
0.096 mg.
Citrato de Na
1 096.72mg.
Cloruro de K
72.60 mg.
%
24.15
29.95
45.89
7.24 mg.
1.20 mg.
22.36 mg.
69.69 mg.
4.03 mg.
0.50 mg.
0.0024 mg.
0.0012 mg.
0.0004 mg.
0.000014 mg.
1.206 mg.
1 312.5 mg.
1 087.5 mg.
562.5 mg.
93
Anexo 7 Formula láctea a mitad del estudio.
INGREDIENTES
Sustituto de leche para perro
Leche de soya
Leche “MultiMIlk”
Pedialyte
Multivitaminas
Dextrosa 50%
Calcio
Vitamina C
Vitamina E
Aceite de canola
CANTIDAD
0
40 g.
80 g.
0
0
0
0
0
0
7 ml.
VALOR CALÓRICO TOTAL
6 026.79 Kcal.
CONTENIDO NUTRICIONAL
Proteínas
Hidratos de carbono
Lípidos
Vitamina A
Vitamina B1
Vitamina B2
Vitamina B6
Vitamina B12
Vitamina C
Niacina
Vitamina D2
Vitamina D3
Vitamina E
Colina
Biotina
Ac. Fólico
Calcio
Fósforo
POR TOMA g.
40.71
14.63
59.11
TOTAL g.
325.68
11.04
472.88
VITAMINAS Y MINERALES TOTALES
56 880 UI
Magnesio
2.65 mg.
Zinc
4.25 mg.
D-Pantenol
2.12 mg.
Sodio
42.65 mg.
Potasio
0
Cloro
34.12 mg.
Hierro
0
Cobre
5 680 UI
Yodo
128 UI
Selenio
2 062.12 mg.
Manganeso
0.13 mg.
Cloruro de Na
0.42 mg.
Citrato de Na
6.92 mg.
Cloruro de K
5.77 mg.
%
21.61
7.76
70.61
0.42 mg.
0.032 mg.
35.45 mg.
66.98 mg.
4.92 mg.
4.92 mg.
0.02 mg.
0.10 mg.
0.032 mg.
0.00012 mg.
0.006 mg.
0
0
0
94
Anexo 8 Formula láctea final.
INGREDIENTES
Sustituto de leche para perro
Leche de soya
Leche “MultiMIlk”
Pedialyte
Multivitaminas
Dextrosa 50%
Calcio
Vitamina C
Vitamina E
Aceite de canola
CANTIDAD
0
0
120 g.
0
0
0
0
0
0
0
VALOR CALÓRICO TOTAL
4 428 Kcal.
CONTENIDO NUTRICIONAL
Proteínas
Hidratos de carbono
Lípidos
Vitamina A
Vitamina B1
Vitamina B2
Vitamina B6
Vitamina B12
Vitamina C
Niacina
Vitamina D2
Vitamina D3
Vitamina E
Colina
Biotina
Ac. Fólico
Calcio
Fósforo
POR TOMA g.
36
0
66
TOTAL g.
216
0
396
VITAMINAS Y MINERALES TOTALES
85 320 UI
Magnesio
3.98 mg.
Zinc
6.38 mg.
D-Pantenol
3.18 mg.
Sodio
63.98 mg.
Potasio
0
Cloro
51.18 mg.
Hierro
0
Cobre
8 520 UI
Yodo
192 UI
Selenio
3 093.18 mg.
Manganeso
0.20 mg.
Cloruro de Na
0.63 mg.
Citrato de Na
10.38 mg.
Cloruro de K
8.66 mg.
%
19.51
0
80.48
0.64 mg.
0.04 mg.
53.18 mg.
4.13 mg.
7.38 mg.
7.38 mg.
0.03 mg.
0.016 mg.
0.048 mg.
0.00018 mg.
0.009 mg.
0
0
0
95