CIV-76.

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PURIFICACIÓN DE LACASAS Y SU APLICACIÓN EN LA REMOCIÓN DE CONTAMINANTES
EN AGUA.
Rafael Valera Pérez1, Karla Patricia Becerra Cano1, Alma Ivonne Arce Rodríguez2, Romero Martínez Renata2, Claudia
Montalvo Paquini2, M.L. Osnelda Villegas Rosas3, Alejandro I.A. Alonso Calderón1,2,3
(1) Facultad de Ingeniería Química de la BUAP, (2) Universidad Politécnica de Puebla (3) Instituto de Ciencias,
Posgrado en Ciencias Ambientales BUAP, , augusto96mx@hotmail.com isalonso@siu.buap.mx
Palabras clave: Lacasas, cromatografía, colorantes
Antecedentes: El empleo de hongos de la
podredumbre blanca es una alternativa para realizar la
decoloración de efluentes. Es por ello que hongos
lignolíticos como Pleurotus ostreatus, han sido
ampliamente estudiados debido a que en particular
este microorganismo posee una maquinaria enzimática
compleja que le permite degradar sustancias tales
como lignina, celulosa y hemicelulosa1,2. Como
objetivos de este trabajo fue el de producir y purificar a
la enzima lacasa (ρ-difenol: oxígeno óxido reductasas
E.C: 1.10.3.2) a partir de Pleurotus ostreatus y remover
diversos contaminantes aromáticos y colorantes de
natualeza “azo” ampliamente utilizados por la Industria
textil poblana.
Metodología. Se utilizo la cepa de Pleurotus ostreatus
donada por el Departamento de Investigaciones en
Ciencias Agrícolas del ICUAP la cual se propago en
medio PDA, para la producción de las enzimas lacasa
se prepararon medios líquidos minerales a base de AllBran, se monitoreo la producción de estas enzimas en
fermentación liquida a los 3, 5, 7, y 10 días, utilizando
ABTS (ácido
2,2'-azino-bis (3-etilbenzotiazolin6-sulfonico), monitoreando la oxidación del sustrato a
420nm utilizando un espectrofotómetro Agilent 8453
UV-visible con programa de cinéticas.
El concentrado enzimático de la fermentación con
mayor actividad lacasa se aplico en aguas
contaminadas con los colorantes azul cibacron y azul
solofenil a 50 ppm y 200 ppm, así como a los
compuestos aromáticos anilina y 2-clorofenol a 100
ppm, todas las determinaciones se realizaron por
triplicado. Con la finalidad de aumentar la purificación
de la enzima, la muestra con mayor actividad se
sometió a un proceso de diálisis en buffer de fosfatos
20 mM/ pH: 7.4/12 h. transcurrido el tiempo se purifico
mediante cromatografía de intercambio aniónico DE53, realizando elución isocrática (NaCl 1M) y de
gradiente lineal de concentración (20 mM-800 mM de
NaCl amortiguado en buffer de fosfatos pH: 7.4, 20
mM).
Para conocer la masa molecular de la enzima
purificadas se realizo mediante electroforesis en gel de
poliacrilamida al 12% de concentración, utilizando 15
µL de extracto a 120 V/2:30 h.
Resultados y Discusión. La mayor actividad lacasa
se tuvo a los 7 días de fermentación líquida y esta al
aplicarla en las muestras de agua contaminada fue
capaz de remover al azul cibacron a 50 ppm en un
94% y a 200 ppm en un 97% en lo que se refiere al
azul solofenil se tuvieron remociones de un 77 y 74%
respectivamente, además de polimerizar a la anilina y
al 2-Clorofenol generando productos de reacción
insolubles. La purificación permitió aumentar la
actividad enzimática de 167 a 451.1 UI/mL en la última
etapa de purificación, la electroforesis evidencio una
masa molecular de 56.2 kDa, característica de las
lacasas.
Conclusiones. La utilización de hongos para la
producción de enzimas que tradicionalmente se han
utilizado para la alimentación abre un abanico de
posibilidades de aplicarlas en la biorremediación y de
esa manera estos productos bióticos autóctonos de
nuestro país adquieran un valor agregado.
Bibliografía.
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2.- Vázquez, D, R y Dávila, G, (2006), “Enzimas lignolíticas
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Universidad Nacional Autónoma de México. Higuchi, T. Lignin
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